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神经HRP示踪显色液(TMB法)说明书

上个世纪 70 年代，Kristensopn 和 Olsson 报道了HRP可神经末梢摄取，经轴浆逆行运输至神经元胞体，经组织化学方法可显示出神经元的轮廓，从而开发出 HRP  追踪神经元示踪技术，即为 HRP 法。3,3',5,5'-四甲基联苯胺(TMB)是非常优越的酶免试验显色剂，能溶解于多种有机溶剂和双蒸水中，为稳定的无色溶液，不适量过氧化脲或双氧水不缓冲液混   匀后，不过氧化物酶作用产生清晰的蓝色产物，极易观察，在辣根过氧化物酶的催化下 , TMB 会产生蓝色沉淀，该沉淀不溶于水和乙醇，显色后呈蓝色，可在显微镜下观察。

神经 HRP 示踪显色液(TMB 法)是动物经麻醉、注入HRP后，游离或络合型的 HRP 不氧化剂反应生成络合物，该络合物氧化供氢的 TMB 显色剂，呈蓝色，在显微镜下清晰可见，该检测法较 DAB  法灵敏。该显色液仅用于科研领域，不宜用于临床诊断或其他用途。

神经HRP示踪显色液（TMB法）说明书

操作步骤(仅供参考)：

(一)、准备工作

1、动物麻醉：多用(3.5%)戊巴比托妥钠作为麻醉剂，大鼠的麻醉剂量为 0.25-0.35ml/100g。

2、导入HRP：有压力注射法、电泳法以及周围神经系统的注射涂抹等法。

3、确定动物存活期。

4、动物灌注：麻醉后，经左心室升主动脉插管行心内灌注固定。先用生理盐水或 PBS 快速灌注。随后用 4%的多聚甲醛固定液灌注，先快后慢，时间控制在 30-40min。后用 10% 蔗糖磷酸缓冲液(pH7.4)。

5、取材：取组织置于 20%的蔗糖磷酸盐缓冲液中，切片厚度 40μm，存于蔗糖磷酸盐缓冲液备用。

(二)、显色反应

1、配制 TMB孵育液：取适量的TMB assay buffer 和TMB显色液，按 TMB assay buffer： TMB显色液=39:1 的比例混合，即为 TMB孵育液，即配即用，不宜保存。

2、配制TMB显色工作液：取适量的TMB孵育液和TMB增强剂，按TMB孵育液：TMB 增强剂=2000～8000：1 的比例混合(具体比例应根据具体时间摸索确定)，即为TMB显色工作液，即配即用，不宜保存。

3、配制 1×TMB Wash buffer：取适量的TMB Wash buffer(20×)，按TMB Wash buffer： 蒸馏水=1:19 的比例混合，即为 1×TMB Wash buffer。室温保存6个月有效。

4、切片用蒸馏水清洗 3 次，每次 2min。

5、切片入10ml TMB孵育液(提前 20℃温育)，避光孵育20min，其间不断晃动。

6、切片入10ml TMB 显色工作液(提前 20℃温育)，避光孵育 20min，其间不断晃动。7、漂洗：取10ml左右的1×TMB Wash buffer 漂洗切片2-3 次，每次 5min。

8、贴片，载玻片用铬明矾明胶包被，室温空气干燥。

9、脱水、透明步骤按如下操作：

①蒸馏水 10s

②70%乙醇  10s

③95%乙醇  10s

④100%乙醇 2 次，每次 10s

⑤二甲苯2次，每次 2～5min。

1. 中性树胶封片，显微镜下观察蓝色反应。

注意事项：

1、如果出现高的反应背景或沉淀，表明TMB底物反应过于强烈。

2、所用器皿必须洁净，避免含有氧化剂或还原剂，否则会产生非特异性反应。

3、TMB显色液避免反复冻融，以免显色效率下降。

4、TMB增强剂注意密闭保存，否则显色效率下降。

有效期： 12 个月内有效。

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