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藻类高通量光合作用测量系统

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参数
产地类别:进口 价格区间:面议 应用领域:环保,生物产业,农业,能源,综合
北京易科泰生态技术有限公司

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土壤与植物生理生态研究监测、环境气象监测、水文水质及地下水监测、水土保持研究监测、荒漠化监测、精准农业以及动物生态研究等仪器技术的引进推广和系统集成,并为生态环境实验研究和规划设计提供技术方案和分析测量。

   北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为中关村高新技术企业,致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务,特别是在光谱成像技术(高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等)、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面,与专业企业PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成,为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。


   公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech®实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心(与陕西师范大学合作建立)、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro 光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。


   易科泰公司与欧洲PSI公司(叶绿素荧光技术与表型分析技术)、美国SABLE公司(动物能量代谢技术)、欧洲SPECIM公司(高光谱成像技术)、欧洲WORKSWELL公司(红外热成像技术)、欧洲ATOMTRACE公司(LIBS元素分析技术)、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司(样芯密度扫描与元素分析)、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系,在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验,成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone®无人机遥感平台、SoilTron®多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox®土壤呼吸测量技术、PhenoPlot®轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等,在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络(生态系统监测网络)等项目中发挥重要作用。


   “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态-农业-健康研究与发展提供优秀的技术方案和服务。


欢迎关注北京易科泰微信公众号







详细信息

藻类高通量光合作用测量系统具备叶绿素荧光成像和光合放氧测量的功能,通过测定微藻的叶绿素荧光参数和气体交换参数,评价其光化学转化效率和光合速率,全面评估微藻光合作用物质和能量的转化。系统具备快速、高通量的特点,可同时对96个样品进行测量。系统广泛用于藻类光合生理研究、藻类突变体筛选、藻类遗传改良、藻类养殖、污水处理、生物燃料和生物肥料的制造等研究和应用领域。

藻类高通量光合作用测量系统

功能特点

l 高通量:近百个样品同时测量

l 全面评价光合作用:藻类叶绿素荧光参数和光合速率均可测定

l 非侵入性和非破坏性测量

l 系统简单易用

l 氧气测量高精度、高可靠性、低功耗、低交叉敏感性、快速响应时间

技术参数

1. 测量参数Fo, Fo, Fs, Fm, Fm, Fp, FtDn, FtLn, Fv, Fv'/ Fm', Fv/ Fm, Fv', Ft,ΦPSII, NPQ_Dn, NPQ_Ln, Qp_Dn, Qp_Ln, qN, qL, QY, QY_Ln, Rfd, ETR50多个叶绿素荧光参数以及光合速率、呼吸速率

2. 可同时对近百个藻类样品进行测量

3. 叶绿素荧光成像单元具备完备的自动测量程序(protocol),可自由对自动测量程序进行编辑,包括Fv/FmKautsky诱导效应、荧光淬灭分析、光响应曲线LC

4. 叶绿素荧光数据分析模式:具备在低信噪比的情况下使用的信号平均再计算模式,以过滤掉噪音带来的误差,适用于低浓度的藻类样品。

5. 叶绿素荧光成像分析软件功能:具Live(实况测试)、Protocols(实验程序选择定制)、Pre–processing(成像预处理)、Result(成像分析结果)等功能菜单

6. 叶绿素荧光成像预处理:程序软件可自动识别多个植物样品或多个区域,也可手动选择区域(Region of interestROI)。手动选区的形状可以是方形、圆形、任意多边形或扇形。软件可自动测量分析每个样品和选定区域的荧光动力学曲线及相应参数,样品或区域数量不受限制(>1000

7. 氧气检测技术:光纤氧传感器技术

8. 测量呼吸室:透明聚苯乙烯材质,支持预消毒处理,可重复使用

9. 氧气测量主机:单个重670 g162 x 102 x 32 mm

10. 氧气主机内置温度传感器:0-50°C,分辨率0.012°C,精度±0.5°C

11. 氧气主机内置压强传感器:300-1100mbar,分辨率0.11mbar,精度±6mbar

12. 氧气最大采样频率:单通道激活时可达10-20次每秒

13. 氧气测量精度:±0.1% O2@1% O2±0.05 mg/L@0.44 mg/L

14. 氧气测量分辨率:0.01% O2@1% O20.005 mg/L@0.44 mg/L

15. 测量通道数:96

应用案例

1. Perin等人采用藻类高通量光合作用测量系统初步筛选微拟球藻Nannochloropsis gaditana的高光效突变体。研究小组使用化学引变剂乙基甲烷磺酸盐(EMS)诱导突变和插入突变两种方式生成突变体库,使用叶绿素荧光成像技术检测其光合活性的可能变化,使用的叶绿素荧光参数包括最小荧光F0、最大光化学效率Fv/Fm、有效光化学效率ΦPSII、光系统调节能力NPQPerin et al., 2015)。

藻类高通量光合作用测量系统

2. 不列颠哥伦比亚大学生物多样性研究中心使用了藻类高通量光合作用测量系统评估了全球变暖对斜生栅藻(Scenedesmus obliquus)光合速率和呼吸速率的影响,发现两者均对测试温度表现出一定的可塑性。不同选择温度12℃、18℃)的栅藻光合速率无差异;而高温选择(18℃)的栅藻相对低温选择(12℃)的栅藻,具有更高的呼吸速率(Tseng et al., 2019)。

藻类高通量光合作用测量系统


参考文献

1. Claudi, R., Alei, E., Battistuzzi, M., Cocola, L., Erculiani, M.S., Pozzer, A.C., Salasnich, B., Simionato, D., Squicciarini, V., Poletto, L., La Rocca, N., 2021. Super-Earths, M Dwarfs, and Photosynthetic Organisms: Habitability in the Lab. Life 11(1): 10

2. Dann, M., Ortiz, E.M., Thomas, M., Guljamow, A., Lehmann, M., Schaefer, H., Leister, D., 2021. Enhancing photosynthesis at high light levels by adaptive laboratory evolution. Nat. Plants 7, 681–695.

3. Gavel, A., Maršálek, B., 2004. A novel approach for phytotoxicity assessment by CCD fluorescence imaging. Environmental Toxicology 19, 429–432.

4. Herdean, A., Hall, C., Hughes, D.J., Kuzhiumparambil, U., Diocaretz, B.C., Ralph, P.J., 2023. Temperature mapping of non-photochemical quenching in Chlorella vulgaris. Photosynth Res 155, 191–202.

5. Macário, I.P.E., Veloso, T., Frankenbach, S., Serôdio, J., Passos, H., Sousa, C., Gonçalves, F.J.M., Ventura, S.P.M., Pereira, J.L., 2022. Cyanobacteria as Candidates to Support Mars Colonization: Growth and Biofertilization Potential Using Mars Regolith as a Resource. Front Microbiol 13, 840098.

6. Nowicka, B., 2020. Practical aspects of the measurements of non‐photochemical chlorophyll fluorescence quenching in green microalgae Chlamydomonas reinhardtii using Open FluorCam. Physiologia Plantarum 168, 617–629.

7. Perozeni, F., Stella, G., Ballottari, M., 2018. LHCSR Expression under HSP70/RBCS2 Promoter as a Strategy to Increase Productivity in Microalgae. IJMS 19, 155.

8. Tseng, M., Bernhardt, J.R., Chila, A.E., 2019. Species interactions mediate thermal evolution. Evolutionary Applications 12, 1463–1474.

9. Bernhardt, J.R., Sunday, J.M., O’Connor, M.I., 2017. An empirical test of the temperature dependence of carrying capacity. bioRxiv, 210690.


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