注意：冷冻保存的细胞非常脆弱。将小瓶置于37°C水浴融化细胞，然后尽快移入培养物(液)中，尽量减少操作。

准备

1.准备纤维连接蛋白包被的培养瓶(2 μg /cm2，推荐用T-75的培养瓶)。向培养瓶中加入10 ml无菌Dulbecco's磷酸盐缓冲液（DPBS），然后加入150 μl 纤维连接蛋白原液(1 mg/ml, Sigma cat. no. F1141)。将培养瓶放入培养箱中孵育。

2.准备*培养基：用70%的酒精消毒培养基和添加物的外表面，然后放到无菌的地方。在无菌环境下打开每一个添加物管并用吸管将其加入到基本培养基中。以保证添加物全部加入基本培养基中。

3.吸出纤维连接蛋白溶液并向瓶内加入20 ml*培养基。将培养瓶放入超净台中，然后准备融化细胞。纤维连接蛋白溶液可以使用两次。

4.将小瓶放入37°C水浴中，握住并轻轻旋转小瓶直到其内细胞*融化。将小瓶立刻移出水浴，擦干，用70%的酒精冲洗小瓶，然后放到无菌环境中。小心地打开盖子，注意手指不要碰到里面的螺纹。eppendorf吸管轻轻重悬管内容物。

5.将管内容物均匀的放入纤维连接蛋白包被的培养瓶中。推荐的接种密度为7,500 cells/cm2。

注意：不推荐在细胞融化后进行稀释和离心，因为这些操作比培养基中的DMSO残留物对细胞的伤害更大。需要注意的是，内皮细胞接种在纤维连接蛋白包被的培养瓶中能够促进细胞的帖壁。

6.盖好培养瓶的盖子，轻轻地摇动培养瓶以使细胞分布均匀，如需气体交换则适当放松瓶盖。

7.将培养瓶放入培养箱中。

8.为了得到良好的结果，在培养开始后至少16个小时内不要动培养物。第二天更换培养基以去除残留的DMSO和未贴壁的细胞，然后每隔一天进行如上操作。培养良好的细胞将呈现鹅卵石形或纺锤体形，细胞质无颗粒且细胞数量在培养2-3天后会倍增。[2] 

培养的维持

1.应用冰冻的细胞构建培养物后，可于次日早晨更换新鲜的含有添加物的培养基。随后的传代培养中，每隔48小时更换一次培养基。

2.此后每隔一天更换一次培养基，直到细胞约达到50%融合。

3.一旦细胞达到50%融合，则要每天更换培养基直到细胞大约达到90%融合。

传代培养：

1.细胞达到90%融合时进行传代培养。

2.传代培养的前一天准备纤维连接蛋白包被的培养瓶(2 μg/cm2)。

3.将培养基，胰酶/EDTA消化液，胰酶中和液和DPBS(磷酸盐缓冲液) 加热至室温。我们不推荐在使用前用37°C水浴加热试剂和培养基。

4.用DPBS冲洗细胞。

5.用10 ml胰酶/EDTA消化液消化细胞(以T-75培养瓶为例)，直到80%细胞呈现圆形(在显微镜下观察)。立刻加入10 ml 胰酶中和液并轻轻摇动培养瓶。

注意：应用ScienCell研究室的胰酶/EDTA消化液能使由于过度消化导致的细胞死亡降到zui小程度。

6.收取细胞并将其移入50ml离心管中。另外用10ml生长培养基冲洗培养瓶以收集残留的细胞。在显微镜下观察剩余细胞数量以确定是否收集成功。剩余细胞数应小于5%。

7.以1000转/分（1000rpm）离心收取的细胞悬液5分钟，然后在生长培养基中重悬细胞。

8. 计数细胞，然后将它们以推荐的细胞密度接种在新的纤维连接蛋白包被过的培养瓶中

注意：

处理人类来源的产品存在潜在的生物风险。尽管每一株细胞经检测为艾滋病病毒，乙肝病毒，丙肝病毒阴性，但检测并不能达到100%准确，因此，必须采取适当的保护措施以避免无意中的暴露。操作这些产品时请带手套和安全镜。不要用嘴吸。我们推荐采用通用的程序来处理人源性产品，从而达到以zui小的预防来对抗污染。