林可霉素快速检测试剂盒说明书
时间:2020-11-13 阅读:2684
林可霉素
快速检测试剂盒说明书
一、原理
试剂盒采用间接竞争ELISA方法,在微孔条上预包被偶联抗原,样本中的残留物林可霉素药物和微孔条上预包被的偶联抗原竞争抗林可霉素药物抗体,加入酶标记物后,用TMB底物显色,样本吸光值与其所含残留林可霉素药物的含量成负相关,与标准曲线比较即可得出相应残留物林可霉素药物的含量。
二、试剂盒特性
- 试剂盒灵敏度: 0.1ppb
- 孵育温度: 25℃
- 孵育时间: 30min~15min
- 样本检测下限
组 织 ······································ 0.4ppb
饲 料 ······································· 1ppb
蜂 蜜 ······································ 2ppb
- 交叉反应率
林可霉素 ···································· 100%
- 样本回收率
组 织 ······································ 100±25%
饲 料 ······································· 95±25%
蜂 蜜 ······································ 100±25%
三、试剂盒组成
1 | 微量测试孔 | 每条8孔,一板12条 | |
2 | 标准液×6瓶 (1ml/瓶) | 0ppb | 0.1ppb |
0.3ppb | 0.9ppb | ||
2.7ppb | 8.1ppb | ||
3 | 酶标记物 | 7ml | 红色帽 |
4 | 抗体工作液 | 7ml | 蓝色帽 |
5 | 底物A液 | 7ml | 白色帽 |
6 | 底物B液 | 7ml | 黑色帽 |
7 | 终止液 | 7ml | 黄色帽 |
8 | 20X浓缩洗涤液 | 40ml | 白色帽 |
9 | 20X浓缩提取液 | 50ml | 透明帽 |
四、所用仪器、试剂
具备的仪器:微孔酶标仪、打印机、均质器 、振荡器、离心机、刻度移液管、天平(感量0.01g)
微量移液器:单道 20~200ul、单道100~1000ul、多道 250ul
五、样本前处理步骤
- 样本处理前须知
处理任何样本时,都必须注意:
- 本试剂盒所检测的组织样本包括:动物组织、禽类和水产组织。eg:鸡、鸭、猪、牛、兔、鱼、虾等。
- 实验中必须使用一次性吸头,在吸取不同的试剂时要更换吸头。
- 实验之前须检查各种实验器具是否干净,必要时可对实验器具进行清洁,以避免污染干扰实验结果。
- 样本前处理需配制:
配液1 样本提取液:
将去离子水与20X浓缩提取液按19:1稀释。
- 样本前处理方法:
(a)组织样本(鸡肉/肝、猪肉/肝、虾、鱼等)
1、称2.0±0.05g 均质的组织样本于50ml离心管中;
2、加入6ml样本提取液,振荡2min,4000r/min以上,15℃离心10min;
3、取上层50µl液体用于分析。
样本稀释倍数:4
(b)饲料样本
1、称1.0±0.05g 粉碎的饲料样本于50ml离心管中;
2、加入5ml样本提取液,振荡1min,4000r/min以上,15℃离心10min;
3、取上层200µl液体加入200µl样本提取液,震荡混匀,取50µl用于分析。
样本稀释倍数:10
(c)蜂蜜样本
1、称1.0±0.05g 的蜂蜜样本于50ml离心管中;
2、加入5ml样本提取液,振荡1min,4000r/min以上,15℃离心10min;
3、取上层200µl液体加入600µl样本提取液,震荡混匀,取50µl用于分析。
样本稀释倍数:20
六、 酶标免疫分析程序:
- 测定前应须知:
- 使用前将需用试剂和板条的温度回升至室温(20-25℃)。
- 使用之后立即将所有试剂放回2-8℃。
- 在ELISA分析中的再现性,很大程度上取决于洗板的一致性,正确的洗板操作是ELISA测定程序中的要点。
- 所有恒温孵育过程,避免光线照射,用盖板膜盖住微孔板。
- 操作步骤:
- 将试剂盒从冷藏环境中取出并将所需试剂从试剂盒取出,置室温(20-25℃)平衡30min以上, 注意每种液体试剂使用前均须摇匀。
- 按需要取出微孔条及板架,将不用的微孔板重新密封,保存于2-8℃,不要冷冻。
- 配液:将40ml浓缩洗涤液(20倍浓缩)用去离子水按照1:19稀释(1份浓缩洗涤液+19份去离子水),或按所需用量配制洗涤液。
- 编号:将样本和标准品对应微孔按序编号,每个样本和标准品均需做2孔平行,并记录标准孔和样本孔所在的位置。
- 加标准品/样本50µl /孔,然后加酶标记物50μl/孔,再加入抗体工作液50µl/孔。轻轻振荡混匀,用盖板膜盖板,25℃环境反应30min。
- 取出并甩干孔内液体;用洗涤液按每孔250μl洗板4-5次,每次浸泡15-30秒,拍干(拍干后未被清除的气泡可用干净的枪头刺破)。
- 显色:每孔加入底物液A液50µl再加B液50µl,轻轻振荡混匀,25℃环境避光显色15min。
- 测定:加入终止液50µl,轻轻振荡混匀,设定酶标仪于450nm处(建议用双波长450/630nm检测,在5min内读完数据),测定吸光度值(OD值)。
七、结果判定
结果判定有两种方法,粗略判定可用第1种方法,定量判定用第2种方法。注意样本吸光度值与其所含林可霉素药物量成负相关。
1、粗略判定:
用样本的平均吸光度值与标准品比较即可得出其浓度范围(ng/ml)。假设样本1的吸光度值为0.238, 样本2的吸光度值为0.946,标准液吸光度值分别是:0ppb为1.845; 0.1ppb为1.542;0.3ppb为1.130; 0.9ppb为0.635;2.7ppb为0.326; 8.1ppb为0.156。则样本1的浓度范围是2.7ppb - 8.1ppb;样本2的浓度范围是0.3ppb - 0.9ppb。乘以其对应的稀释倍数即为样本中林可霉素药物的实际浓度。
2、定量分析
(1)百分吸光率的计算,标准品或样本的百分吸光率等于标准品或样本的吸光度值的平均值(双孔)除以第--个标准(0标准)的吸光度值,再乘以100%,即
百分吸光率(%)= | B | ×100% |
B0 |
B—标准溶液或样本溶液的平均吸光度值
B0—0ng/L标准溶液的平均吸光度值
(2)标准曲线的绘制与计算
以标准品百分吸光率为纵坐标,以林可霉素标准品浓度(ng/ml)的半对数为横坐标,绘制标准曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中,从标准曲线上读出样本所对应的浓度,乘以其对应的稀释倍数即为样本中林可霉素药物实际浓度。
若利用试剂盒专业分析软件进行计算,更便于大量样本的准确、快速分析。
八、 注意事项
- 室温低于25℃或试剂及标本未回到室温(20-25℃)会导致所有标准的OD值偏低。
- 在洗板过程中如果出现板孔干燥的情况,则会伴随着标准曲线不成线性,重复性不好的现象。所以洗板拍干后应立即进行下一步操作。
- 混合要均匀,否则会出现重复性不好的现象。
- 反应终止液为2M硫酸,避免接触皮肤。
- 不要使用过了有效日期的试剂盒;稀释或搀杂使用会引起灵敏度、OD值变化;不要交换使用不同批号的盒中试剂。
- 不用的微孔板放进自封袋重新密封;标准物质和无色的发色剂对光敏感,因此要避免直接暴露在光线下。
- 显色液若有任何颜色表明变质,应当弃之。标准品1的吸光度值小于0.5时,表示试剂可能变质。
- 若样本处理方法中检测浓度不在曲线范围内时,可将样本稀释一定倍数,使其可检测范围在曲线范围内时检测。
- 该试剂盒J反应温度为25℃,温度过高或过低将导致检测吸光度值和灵敏度发生变化。
九、储藏条件和保质期
- 储藏条件:试剂盒于2-8℃保存,不要冷冻。
- 保 质 期:该产品有效期为1年,生产日期见包装盒。
提示:酶标板真空包装袋若有漏气,酶标板仍然正常有效,不影响实验结果,请放心使用。