链霉素

快速检测试剂盒说明书

一、原理

本试剂盒采用间接竞争ELISA方法，在微孔条上预包被偶联抗原，样本中的残留物链霉素将和微孔条上预包被的偶联抗原竞争抗链霉素抗体，加入酶标记物后，用TMB底物显色，样本吸光值与其所含残留物链霉素的含量成负相关，与标准曲线比较即可得出相应残留物链霉素的含量。

二、试剂盒特性

• 试剂盒灵敏度：   0.1ppb
• 孵育温度：       37℃
• 孵育时间：       30min～30min～15min
• 样本检测下限

鸡 肉 ··············································  1 ppb

鸡肝、牛奶 ······································  4 ppb

蜂 蜜/蜂王浆 ···································  2 ppb

• 交叉反应率

链霉素  ··········································   100%

庆大霉素  ······································· ﹤0.1%

双氢链霉素  ····································  108%

卡那霉素  ······································· ﹤0.1%

• 样本回收率

牛    奶  ····································  85±22%

鸡肉组织  ····································  80±22%

蜂蜜/蜂王浆   ······························  75±22%

三、试剂盒组成

四、所用仪器、试剂

具备的仪器：酶标仪、均质器、振荡器、离心机、刻度移液管、天平（感量0.01g）、恒温箱、恒温水浴锅

微量移液器：单道 20～200µl、单道100～1000µl、多道 30～300 µl

试      剂：氢氧化钠、乙腈、正己烷、三氯yi酸

五、样本前处理步骤

• 样本处理前须知

（a）实验中必须使用一次性吸头，吸取不同试剂时要更换吸头。

（b）实验之前须检查各种实验器具是否干净，必要时可对实验器具进行清洁，以避免污染干扰实验结果。

• 样本前处理需配制：

配液1  0.5%三氯yi酸溶液

取0.5g三氯乙suan加去离子水定容100ml。

配液2  3%三氯乙suan溶液

取3g三氯乙suan加去离子水定容100ml。

配液3  1M NaOH溶液：

称4g NaOH加去离子水定容至100ml。

配液4  0.1M NaOH溶液：

称0.4g NaOH加去离子水定容至100ml。

配液5  样本复溶液：

将10X浓缩复溶液用去离子水1：9稀释。

• 样本处理：

（a）牛奶处理方法

• 取牛奶1ml，按1:39稀释，混合30s。（50µl牛奶+1950µl样本复溶液）
• 取50µl用于分析。

样本稀释倍数:  40倍 

（b）鸡肉处理方法

• 取2±0.05g去除脂肪的匀浆样本,加4ml 3%三氯yi酸，充分混匀2min； 室温4000r/min以上，离心10min；
• 取上清液100µl，加入100µl0.1M NaOH，再加入300 µl样本复溶液，充分混匀；
• 取50µl用于分析。

样本稀释倍数:  10倍 

（c）鸡肝处理方法

• 取2±0.05g去除脂肪的匀浆样本,加6ml 0.5%三氯yi酸和2ml乙腈，充分混匀5min；
• 室温4000r/min以上，离心10min；
• 取2ml上清液加入2ml正己烷，充分混匀静置3min，取0.5ml下层清亮液体，室温4000r/min以上，离心5min；
• 取50µl下层清亮液（若有分层，须去除掉上层液体取下层清亮液体），加入450µl样本复溶液混匀，混合30s；
• 取50µl用于分析。

    样本稀释倍数:  40倍

（d）蜂蜜、蜂王浆处理方法

• 称量1±0.05g 样本加入2ml 去离子水，振荡至*溶解；
• 室温4000r/min以上离心10 min。
• 取100µl上清液，加入400µl样本复溶液混匀，混合30s；
• 取50µl用于分析。

样本稀释倍数: 10倍 

六、 酶标免疫分析程序:

• 测定前应须知：

• 使用前将需用试剂和板条的温度回升至室温（20～25℃）。
• 使用之后立即将所有试剂放回2～8℃。
• 在ELISA分析中的再现性，很大程度上取决于洗板的一致性，正确的洗板操作是ELISA测定程序中的要点。
• 所有恒温孵育过程，避免光线照射，用盖板膜盖住微孔板。

• 操作步骤：

• 从2～8℃冷藏环境中取出所需试剂，室温（20～25℃）平衡30min以上，注意每种液体试剂使用前均须摇匀。
• 取出框架及需要数量的微孔，将不用的微孔放入自封袋，保存于2-8℃。
• 配液：将40ml浓缩洗涤液（20倍浓缩）用去离子水按照1：19稀释（1份浓缩洗涤液+19份去离子水），或按所需用量配制洗涤液。
• 编号：将样本和标准品对应微孔按序编号，每个样本和标准品做2孔平行，并记录标准孔和样本孔所在的位置。
• 加标准品/样本50µl /孔，然后加入抗体工作液50µl/孔，用盖板膜封板，37℃环境中反应30min。
• 倒出孔中液体，将酶标板倒置在吸水纸上拍打，去除孔中液体。加入250µl/孔洗涤液，15-30s后倒出孔中液体，用吸水纸拍干，如此重复操作共洗板5次。
• 酶标记物：加入酶标记物100µl/孔，用盖板膜封板，37℃环境中反应30min。取出酶标板，如前述洗板5次。
• 显色：每孔加入底物A液50µl，再加底物B液50µl，轻轻振荡混匀，37℃环境中避光显色15min。
• 测定：加入终止液50µl/孔，轻轻振荡混匀，设定酶标仪于450nm处（建议用双波长450/630nm检测，5min内读数），测定每孔OD值。

七、结果判定

结果判定有两种方法，粗略判定可用第1种方法，定量判定用第2种方法。注意样本吸光度值与其所含链霉素量成负相关。

1、粗略判定：

用样本的平均吸光度值与标准值比较即可得出其浓度范围(ng/ml)。假设样本1的吸光度值为0.3，样本2的吸光度值为1.0，标准液吸光度值分别是：0ppb为2.243； 0.1ppb为1.816；0.4ppb为1.415；1.6ppb为0.74；6.4ppb为0.313；25.6ppb为0.155。则样本1的浓度范围是6.4ppb～25.6ppb；样本2的浓度范围是0.4ppb～1.6ppb，乘以其对应的稀释倍数即为样本中链霉素实际浓度。

2、定量分析

（1）百分吸光率的计算，标准品或样本的百分吸光率等于标准品或样本的吸光度值的平均值（双孔）除以第-个标准（0标准）的吸光度值，再乘以100%，即

B—标准溶液或样本溶液的平均吸光度值

B₀—0ng/ml标准溶液的平均吸光度值

（2）标准曲线的绘制与计算

以标准品百分吸光率为纵坐标，以链霉素标准品浓度（ng/ml）的半对数为横坐标，绘制标准曲线图。将样本的百分吸光率代入标准曲线中，从标准曲线上读出样本所对应的浓度，乘以其对应的稀释倍数即为样本中链霉素实际浓度。

若利用试剂盒专业分析软件进行计算，更便于大量样本的准确、快速分析。

八、 注意事项

• 室温低于25℃或试剂及标本未回到室温（20～25℃）会导致所有标准的OD值偏低。
• 在洗板过程中如果出现板孔干燥的情况，则会伴随着标准曲线不成线性，重复性不好的现象。所以洗板拍干后应立即进行下一步操作。
• 混合要均匀，否则会出现重复性不好的现象。
• 反应终止液为2M硫酸，避免接触皮肤。
• 不要使用过了有效日期的试剂盒；稀释或搀杂使用会引起灵敏度、OD值变化；不要交换使用不同批号的盒中试剂。
• 不用的微孔板放进自封袋重新密封；标准物质和无色的发色剂对光敏感，因此要避免直接暴露在光线下。
• 显色液若有任何颜色表明变质，应当弃之。标准品1的吸光度值小于0.5时，表示试剂可能变质。
• 该试剂盒jia反应温度为37℃，温度过高或过低将导致检测吸光度值和灵敏度发生变化。

九、储藏条件和保质期

• 储藏条件：试剂盒于2～8℃保存，不要冷冻。
• 保 质 期：该产品有效期为1年，生产日期见包装盒。

提示：酶标板真空包装袋若有漏气，酶标板仍然正常有效，不影响实验结果，请放心使用。

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