可通过荧光显微镜观察，进行多细胞分析的µ-Pattern（微图案）表面的载玻片：

　　● 球状体或类器官具有理想间距的多细胞图案

　　● 用于高分辨率显微镜的具有光学质量的成像小室

　　● 易于操作，无需准备：开箱即用

　　● 提供入门包（小包装：2个/盒），便于试用

　　载玻片的产品应用：

　　● 3D细胞聚集体或2D细胞贴壁单层的培养和成像

　　● 通过显微镜观察，进行球体、类器官、胚状体和干细胞的培养与分析

　　● 无支架培养和3D细胞模型的成像

　　● 在灌注和剪切应力下培养3D细胞聚集体（使用µ-Slide VI 0.4系列产品）

　　● 活细胞成像和荧光显微镜成像

　　● 免疫荧光染色和活细胞和固定细胞的高分辨率荧光显微镜成像

　　技术特点：

　　● µ-Slide载玻片，具有ibiTreat微图案表面，周围是ibidi Bioinert生物惰性表面

　　● 由于表面具有生物惰性，即使在长期培养数天或数周时，细胞也只能附着在图案区域上

　　● 生物惰性表面钝化——优于标准超低附着 (ULA) 表面：

　　●无细胞或蛋白质粘附

　　●长期稳定性

　　●生物惰性

　　● Bioinert层涂覆在ibidi聚合物盖玻片上，在使用高分辨率显微镜成像时可提供高的光学质量

　　● 图案是非荧光的，在相差显微镜下略微可见

　　● 既有µ-Slide 8 Well八孔高壁腔室载玻片，也有µ-Slide VI 0.4六通道载玻片，供选择

　　● 与染色和固定溶液兼容

　　● 生物相容性材料

　　● 也可提供RGD结合基序

　　技术原理：

　　μ-Patterning技术原理 ibidi µ-Patterning技术可为各种球状体和类器官应用提供了空间定义的细胞粘附。微型化的粘附图案不可逆地印在ibidi Polymer Coverslip聚合物盖玻片的非粘附Bioinert surface生物惰性表面上，从而可以精确控制细胞粘附。µ-Patterns（微图案）干燥稳定、无菌、可随时使用。ibiTreat µ-patterns在相差显微镜下略微可见，但在荧光显微镜下不可见。

　　ibiTreat表面是一种强大的表面，因为绝大多数贴壁细胞在其表面上生长良好，无需任何额外的涂层。ibiTreat是ibidi Polymer Coverslip聚合物盖玻片的亲水性、组织培养处理（TC处理）版本。这种物理表面改性，类似于标准细胞培养器皿的组织培养处理，使表面变得亲水并对几乎所有类型的细胞具有粘附性。

　　在ibiTreat上进行特定的蛋白质涂层是很容易实现的，类似于我们的非图案化ibiTreat µ-Slides载玻片。

　　µ-Pattern、Bioinert surface生物惰性表面和ibidi Polymer Coverslip聚合物盖玻片都针对高分辨率成像和显微镜观察进行了优化。

　　µ-Patterning多细胞应用：

　　微图案是优化3D分析的强大工具，因为它们可以在狭小的空间内，为研究每个单独的球体或类器官提供了方便的定位。µ-Slides的平底结构与Bioinert生物惰性钝化相结合，具有出色的光学质量，非常适合用于高分辨率荧光显微镜进行3D细胞培养分析。

　　ibidi的带有多细胞µ-Patterns的载玻片可用于从细胞悬浮液中创建球状体/类器官，使其直接在图案上形成。或者，这些载玻片可用于转移和附着预形成的球体。此外，多细胞µ-Patterns非常适合在定义的几何形状中培养2D细胞单层。

　　球状体应用：

　　在ibiTreat µ-Pattern上，在µ-Slide VI 0.4中静态培养23天的L929细胞创建的球状体。细胞直接接种在ibiTreat µ-Pattern（未涂层）上，或涂有层粘连蛋白或I型胶原蛋白的µ-patterns上。使用相差显微镜的4倍物镜在第1天（左）至第23天（右）拍摄图像，以跟踪球状体的形成。比例尺：200µm。

　　在ibiTreat层粘连蛋白涂层的µ-Pattern上生长的球体（小鼠成纤维细胞L929）的3D容积扫描。细胞核用DAPI（洋红色）染色，F-肌动蛋白用鬼笔环肽-Atto488（绿色）染色。使用MPX多光子显微镜（Prospective Instruments, Dornbirn, AT）成像。

　　细胞单层应用：

　　在µ-Slide VI 0.4中的ibiTreat μ-Pattern图案上的L929细胞单层。细胞直接接种在未涂层的ibiTreat μ-Pattern图案上，或涂有层粘连蛋白或I型胶原蛋白的μ-Pattern图案上。接种25小时后，使用相差显微镜的4倍物镜拍摄图像（左）和单个细胞覆盖点的特写镜头（右）。比例尺：200微米。

　　在涂有I型胶原蛋白的多细胞图案ibiTreat上培养的RCC26（肾细胞癌）细胞的细胞杀伤测定：添加T细胞前（A）、添加T细胞后40分钟（B）、添加T细胞后7小时40分钟（C）和添加T细胞后47小时40分钟（D）。

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