小翊带你轻松搞定qPCR数据分析
时间:2020-05-20 阅读:4783
化繁为简!小翊带你轻松搞定qPCR数据分析
荧光定量PCR(qPCR)是实验室常用的一种技术,该技术可以应用于基因表达分析、基因分型、 病原体检测、SNP分析等。 qPCR实验操作简单,原理易懂,但面对一堆凌乱的数据,如何进行结果分析成了头疼的问题,今天小翊将带你学会如何化繁为简,轻松获得可以发表SCI的数据!
qPCR常用的分析方法有相对定量和定量,需根据不同的实验设计进行选择。本期我们关注的是qPCR常见的应用—基因表达分析,一般选择相对定量法。
1.实验设计
假设目前需要研究光诱导对拟南芥AtSUC2基因表达的影响,以未经过任何处理的拟南芥植株作为对照组,实验组为经过一定光诱导处理过的植株,分别提取RNA进行反转录,以得到的cDNA为模板,选择拟南芥GAPDH基因作为内参,进行qPCR实验。
需要设置的qPCR孔如下:
1)NTC用来验证PCR体系中是否存在污染;
2)NRT是指用未经反转录的RNA作为模板,是对gDNA残留的控制;
3)内参基因用来校正因样品初始浓度不同而造成的差异;
4)而对照样品的选择一般有以下几种情况:
♦ 某处理方法对基因表达的影响,将未处理的样本作为参照样本;
♦ 检测基因在不同时间的表达差异,将0时刻的样本作为参照样本;
♦ 比较基因在不同组织中的表达差异,人为选定一个组织作为参照样本。
这里需要注意的一点是,上面每个材料都设置了3个PCR孔(1、2、3),这是PCR重复,即技术性重复,是为了消除操作误差,正确评估扩增效率。此外还需设置生物学重复,即不同的材料(时间、植株、批次、反应板)做的同一实验,目的是校准生物学误差,分析处理是否具有统计意义。具体到本例中,实验组和对照组都需要至少再处理两组拟南芥样本(A、B、C),分别提RNA进行逆转录,再做qPCR,统计时以三个生物学重复的平均值进行分析。
2.结果分析——△△Ct法
△△Ct法的特点是只依靠Ct值来计算结果,但前提是目的基因与内参基因的扩增效率较为一致并且都在90-110%之间。具体的计算公式为:
△Ct= Ct(目的基因)- Ct(内参基因)
△△ Ct= △Ct(实验组)- △Ct(对照组)
RQ=2^-△△Ct,RQ即为研究的目的基因在处理的样本中相比对照组的相对表达量。
假设上面研究光诱导对拟南芥AtSUC2基因表达影响的实验中,qPCR的结果如下:
| 实验组(复孔Ct平均值) | 对照组(复孔Ct平均值) | ||||
A | B | C | A | B | C | |
AtSUC2 | 23.60 | 23.00 | 23.15 | 25.80 | 26.32 | 27.00 |
GAPDH | 16.75 | 16.80 | 16.72 | 16.75 | 16.50 | 16.00 |
△Ct | 6.85 | 6.20 | 6.43 | 9.05 | 9.82 | 11.00 |
2^-△Ct | 0.00867 | 0.01360 | 0.01160 | 0.00189 | 0.00111 | 0.00049 |
|
|
|
| 0.00116 | ||
2^-△△Ct | 7.47285 | 11.72617 | 9.99814 | 1.62637 | 0.95373 | 0.42093 |
Ave | 9.73238 | 1.00035 | ||||
SEM | 2.13907 | 0.60407 |
计算时,首先我们把对照组的2^-△Ct数据求平均值(上图中为0.00116),然后用2^-△Ct中的每一个数据除以这个平均值,即得到2^-△△Ct的值,后再整理得到平均值与标准差,表明实验组目的基因表达量相比对照组提高了约9.73倍。结果用Graphpad软件作图如下:
利用软件的t检验计算出P value=0.0024<0.05,表明具有统计学差异,结果可信。
3.结果分析——双标准曲线法
在实际应用中,由于目的基因与内参基因的扩增效率常常是不同的,需要重新设计引物,优化反应条件使得扩增效率相同,但其实我们还可以选择更方便的双标准曲线法。
这里我们先了解下定量的分析方法。具体的步骤是先通过PCR扩增目的片段,然后将目的片段插入克隆载体中,提取重组质粒,待测序正确后即可作为标准品。质粒DNA量可用Nanodrop等仪器测定,通过拷贝数换算公式转换成具体的质粒拷贝数,然后进行倍比稀释后扩增。以标准品拷贝数的对数值为横坐标,以测得的Ct值为纵坐标绘制标准曲线,根据未知样品的Ct值就可以计算出其拷贝数。
拷贝数计算公式:拷贝数=(质量÷相对分子质量)×6.02×1023。
双标准曲线法是通过分别构建目的基因与内参基因的标准品,进行定量并制作标准曲线,计算出未知样品拷贝数之后再进行比较,因此准确性更高。
具体的计算公式为:
Q=目的基因拷贝数/内参基因拷贝数
RQ=Q实验/Q对照
假设上面研究光诱导对拟南芥AtSUC2基因表达影响的实验中,分别构建AtSUC2与GAPDH的标准品,制作标准曲线如下:
待测样品目的基因和内参基因的Ct值如下:
| 实验组 | 对照组 | |||||
| A | B | C | A | B | C | |
AtSUC2 | Ct值 | 23.60 | 23.00 | 23.15 | 25.80 | 26.32 | 27.00 |
Copies | 2238.72 | 2884.03 | 3083.19 | 466.34 | 321.88 | 198.15 | |
GAPDH | Ct值 | 16.75 | 16.80 | 16.72 | 16.75 | 16.50 | 16.00 |
Copies | 218776.16 | 213796.21 | 223872.11 | 219785.99 | 260615.35 | 365594.79 | |
Q | 0.01023 | 0.01349 | 0.01377 | 0.00212 | 0.00124 | 0.00054 | |
|
|
|
| 0.00130 | |||
RQ | 7.87148 | 10.37664 | 10.59392 | 1.63214 | 0.95007 | 0.41692 | |
Ave | 9.61401 | 0.99971 | |||||
SEM | 1.51298 | 0.60913 |
计算时,首先将目的基因与内参基因的Ct值代入标准曲线的线性关系中,获得目的基因与内参基因分别在实验组和对照组中的拷贝数,然后按公式Q=目的基因拷贝数/内参基因拷贝数,使得目的基因的表达量均一化。后按公式RQ=Q实验/Q对照,计算出RQ= 9.71,表示目的基因在实验组的表达量比对照组上升9.71倍。
结果用Graphpad软件作图如下:
利用软件的t检验计算出P value=0.0008<0.05,表明具有统计学差异,结果可信。
本期的qPCR数据分析就到这里结束了,下面小翊为你推荐一波产品,让你的实验数据更加准确可靠,快来pick吧!
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) | *(元) |
Hifair® Ⅲ 1st Strand cDNA Synthesis SuperMix for qPCR (gDNA digester plus) | 11141ES60 | 100 T | 1383 | 798 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (No Rox ) | 11201ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (Low Rox Plus) | 11202ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hifair® qPCR SYBR® Green Master Mix (High Rox Plus) | 11203ES08 | 5 mL | 740 | 498 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,No Rox) | 11195ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,Low Rox) | 11196ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® Power qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,High Rox) | 11197ES08 | 5 mL | 1653 | 663 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,No Rox) | 11198ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,Low Rox) | 11199ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |
Hieff UNICON® qPCR SYBR Green Master Mix ( 抗体法,High Rox) | 11200ES08 | 5 mL | 1466 | 586 |