细胞计数及活力测定实验原理
时间:2016-06-13 阅读:1318
细胞计数及活力测定实验原理
一、原理ELISA试剂盒
培养的细胞在一般条件下要求有一定的密度才能生长良好,所以要进行细胞计数。计数结果以每毫升细胞数表示。细胞计数的原理和方法与血细胞计数相同。
在细胞群体中总有一些因各种原因而死亡的细胞,总细胞中活细胞所占的百分比叫做细胞活力,由组织中分离细胞一般也要检查活力,以了解分离的过程对细胞是否有损伤作用。复苏后的细胞也要检查活力,了解冻存和复苏的效果。
用台盼兰染细胞,死细胞着色,活细胞不着色,从而可以区分死细胞与活细胞。利用细胞内某些酶与特定的试剂发生显色反应,也可测定细胞相对数和相对活力。
二、仪器、用品与试剂
1、仪器与用品:普通显微镜、血球计数板、试管、吸管、酶标仪(或分光光度计)
2、试剂:0.4%台盼兰,0.5%四甲基偶氮唑盐(MTT)、酸化异丙醇
3、材料:细胞悬液
三、操作步骤
(一)细胞计数
1、将血球计数板及盖片用擦试干净,并将盖片盖在计数板上。
2、将细胞悬液吸出少许,滴加在盖片边缘,使悬液充满盖片和计数板之间。
3、静置3分钟。
4、镜下观察,计算计数板四大格细胞总数,压线细胞只计左侧和上方的。然后按下式计算:
细胞数/ml=4大格细胞总数/ 4×10000
注意:镜下偶见由两个以上细胞组成的细胞团,应按单个细胞计算,若细胞团占10%以上,说明分散不好,需重新制备细胞悬液。
(二)细胞活力
1、将细胞悬液以0.5ml加入试管中。
2、加入0.5ml 0.4%台盼兰染液,染色2一3分钟。
3、吸取少许悬液涂于载玻片上,加上盖片。
4、镜下取几个任意视野分别计死细胞和活细胞数,计细胞活力。
死细胞能被台盼兰染上色,镜下可见深兰色的细胞,活细胞不被染色,镜下呈无色透明状。
活力测定可以和细胞计数合起来进行,但要考虑到染液对原细胞悬液的加倍稀释作用。
(三)MTT法测细胞相对数和相对活力
活细胞中的琥珀酸脱氢酶可使MTT分解产生兰色结晶状甲赞颗粒积于细胞内和细胞周围。其量与细胞数呈正比,也与细胞活力呈正比。
1、细胞悬液以1000rpm离心10分钟,弃上清液。
2、沉淀加入0.5-1ml MTT,吹打成悬液。
3、37℃下保温2小时。
4、加入4-5 ml酸化异丙醇(定容)。打匀。
5、1000 rpm离心,取上清液酶标仪或分光光度计570nm比色,酸化异丙醇调零点。
proBNP脑纳素前体抗体
BST1 骨髓基质干细胞抗原1抗体
Phospho-Btk (Ser180) 磷酸化蛋白酪氨酸激酶ATK抗体
Phospho-BTK (Tyr223) 磷酸化蛋白酪氨酸激酶ATK抗体
Phospho-Bad (Ser112) 磷酸化相关死亡促进因子抗体
phospho-Bim (Ser55) 磷酸化细胞死亡调解子抗体
phospho-Bim (Ser69) 磷酸化细胞死亡调解子抗体
BAG2 Bcl-2结合抑凋亡蛋白2抗体
beta-Amyloid (1-42)β淀粉样肽1-42抗体
phospho-beta Adducin (Ser713)磷酸化内收蛋白抗体
CD274 程序性死亡配体1抗体
B7-H1/PD-L1/CD274 程序性死亡配体1抗体
beta-Amyloid (1-42)β淀粉样肽(1-42)抗体
beta-Amyloid (1-42)β淀粉样肽(1-42)单克隆抗体