Quick Cell 外泌体提取试剂盒使用说明书
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Quick Cell 外泌体提取试剂盒 | D3030L1411 | 20 T | 常温 | 5500 |
产品描述
外泌体是由细胞分泌的包含RNA和蛋白质的小囊泡(20-200 nm),在血液、唾液、尿液及乳汁等体液中大量存在。外泌体被认为具有细胞间信使的功能,在特定细胞之间传递它们的效应物或信号分子;然而其构造、效应物组成以及所参与的生物学通路目前尚不明晰。
外泌体的生物学功能研究中需要分离完整的外泌体颗粒,而传统超速离心方法步骤繁琐、硬件要求高、操作难度大。李记生物自主开发的外泌体快速提取试剂盒,组分经过优化处理,适用于细胞培养上清液、血清、血浆、尿液及其他体液(脑脊液、腹水、羊水、乳汁以及唾液等)中的外泌体提取,并搭配纯化过滤装置,可快速地获得高纯度外泌体颗粒。
本试剂盒处理单位样品成本仅为国外同类产品的1/6-1/3,经上海市计量测试技术研究院检测,本试剂盒与国外产品提取纯化相同样品所得的外泌体,没有显著差异。
试剂盒组成
组分名称 | 货号 | 规格 |
Exosomoe Concentration Solution | D3030L1411-1 | 100 mL |
Exosomoe Purification Filter | D3030L1411-2 | 20 tubes(2mL) |
*RNase/DNase Free, Sterile
运输与保存条件
常温运输,室温条件下质保期24个月,使用前充分混匀。
使用方法
1.条件准备
①高速离心机(可达10000g离心力);2mL、50mL(或15mL)离心转子;1.5mL,50mL(或15mL)离心管;② 1×PBS缓冲液。
2.样品预处理
①样品准备:如果是冻存样品,从冰箱取出后于25℃水浴中进行解冻,将*融化后的样品置于冰上;如果是新鲜样品,收集样品后置于冰上;
②离心去除细胞碎片,将样品转移至离心管中,在4℃,3000 g条件下离心10 min,取上清转移到新离心管中。
③离心去除其他杂质,*次离心收集的上清液,在4℃,10000 g条件下离心20 min,取离心上清液转移到新的离心管中备用。
注:本试剂盒盒可处理多种样品,处理量因样品种类不同而有差异。单次提取可处理的不同样品量范围见下表。
表1.单次提取可以处理的不同样品量的范围(单位:mL)
样品名称 | 细胞上清 | 血清 | 血浆 | 尿液 | 脑脊液 | 腹水 | 羊水 | 乳液 | 唾液 |
样 品 量 | 1~20 | 0.5~10 | 0.5~10 | 1~20 | 1~20 | 1~20 | 1~20 | 1~20 | 0.5~10 |
3.提取外泌体
①上清液预处理:在去除杂质的离心上清液中加入Exosomoe Concentration Solution(ECS试剂);部分粘稠的样品(血清、血浆、乳液、唾液等)需先加入预冷的与样品等体积的1×PBS进行稀释,之后再加入ECS试剂,试剂用量如下表,表中样品为举例值,其他剂量样品根据表中的试剂用量等比例调整。
表2.外泌体提取试剂用量表(单位:mL)
样品名称 | 细胞上清 | 血清 | 血浆 | 尿液 | 脑脊液 | 腹水 | 羊水 | 乳液 | 唾液 |
样品剂量 | 20 | 10 | 10 | 20 | 20 | 20 | 20 | 10 | 10 |
1 x PBS | 20 | 10 | 10 | / | / | / | / | 10 | 10 |
ECS | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 | 5 |
②溶液混合:加入ECS试剂后将离心管盖紧,上下颠倒离心管10-20次,再放置于2℃至8℃静置过夜(10 h-12 h);
③沉淀外泌体:取出装有混合液的离心管于4℃以10000 g离心60 min,弃上清,沉淀中富含外泌体颗粒;(注:尽可能吸净上清液)
④外泌体重悬:取400μL 1×PBS均匀吹打离心沉淀物,待其均匀悬浮在PBS中后,将重悬液转移至新的1.5 mL离心管中;
⑤收获外泌体颗粒:将含有重悬液的1.5mL离心管于4℃以12000 g离心2 min,保留上清液,该上清液中富含外泌体颗粒。
4.纯化外泌体
①纯化外泌体:将收获的外泌体颗粒粗品转入Exosomoe Purification Filter(EPF柱)上室中,于4℃以3000 g离心10 min,离心后收集EPF柱管底的液体,此液体即为纯化后的外泌体颗粒;
②外泌体的保存:纯化后的外泌体以50 -100μL进行分装,分装后的外泌体保存于-80℃低温冰箱中,以备后继实验使用。
常见问题
Q1:粘度大的待测样本如何处理?
A1:待测样品粘度过大时,可将样本用4℃预冷的1×PBS缓冲液进行等体积稀释处理。
Q2:收获的外泌体颗粒无法通过EPF柱纯化时怎么处理?
A2:由血清、血浆、唾液等样品收获的外泌体浓度较高,此时可用4℃预冷的 1×PBS进行稀释后再通过EPF柱离心。
Q3: 外泌体如何保存?
A3:纯化完成后的外泌体可50 μL-100 μL分装后保存于-80℃备用。
Q4:如何鉴定提取的外泌体?
A4:针对外泌体标志蛋白(CD63, CD9, CD81等)进行Western blot检测鉴定所提的外泌体Q5:培养细胞时,血清来源的外泌体怎么去除?
A5:多数情况下,细胞在体外培养需要血清,但血清中含有外泌体,为了避免血清污染细胞产生的外泌体,一般采用2种方法:
①细胞培养前,通过100000×g超速离心过夜,去除血清外泌体。
②可选择无血清培养基进行培养。
Q6:细胞培养过程中死细胞是否会影响外泌体的提取?
A6:会的。在收获细胞时,应确定死亡细胞占所有细胞5%以下。细胞死亡过程中会释放大量大小不等的囊泡,细胞zui终会裂成碎片,它们在外泌体的纯化过程中会污染活细胞产生的外泌体。
应用案例
1、外泌体电镜检测:
本试剂盒提取纯化的PC-12细胞培养上清液中的外泌体颗粒,通过透射电镜(TEM)检测的结果:
从电镜照片中可观察到100 nm左右、具有清晰的膜的茶托样结构,符合外泌体的结构特性(scale bar=100 nm)。
2、外泌体粒径检测:
本试剂盒提取纯化的PC-12细胞培养上清液中的外泌体颗粒,通过美国PPS公司(Particle Sizing Systems) Nicomp 380 Z3000粒度仪检测的结果:
从粒径检测结果来看,纳米颗粒主要分布在10-100nM之间,和预期的外泌体颗粒大小基本吻合(横坐标单位为 nM)。
3、Western blot及qPCR检测:
上图为本试剂盒提取的MCF-7及MHCC97H细胞培养上清液中外泌体膜蛋白CD63的western blot(A)和miRNA qPCR(B)检测结果。