【产品名称】

商品名称：布鲁氏杆菌（Brucella）核酸检测试剂盒（荧光 PCR 法）

Name：Brucella Detection Kit (Real-Time PCR Method)

【包装规格】25T/盒、50T/盒

【预期用途】

布鲁氏杆菌病是由布鲁氏杆菌属（Brucella）引起的全-世界范围内流行的人畜共患病。布鲁氏杆菌可感染多种家畜和野生动物，同时也可感染人，特别是羊布鲁氏杆菌对人的威胁最大，引起相似的临床症状和病理损伤，    如不孕-不育、流产、关节炎、睾丸炎及各种组织的局部病灶等，导致巨大的经济损失和严重的公共卫生问题[1]。

本试剂盒适用于检测羊种、牛种、猪种和犬种血液、动物组织或土壤、物体表面等标本中的布鲁氏杆菌，

用于布鲁氏杆菌感染的辅助诊断。

【检验原理】

本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术，设计一对布鲁氏杆菌特异性引物，结合一条特异性探针， 用荧光 PCR 技术对布氏杆菌的 DNA 进行体外扩增检测，用于科研实验中对可疑感染病料的病原学检测。

【试剂组成】

包装规格25T/盒50T/盒

Brucella 反应液500μL×1 管500μL×2 管

酶液25μL×1 管50μL×1 管

Brucella 阳性质控品250μL ×1 管250μL ×1 管

阴性质控品250μL ×1 管250μL ×1 管

说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用。

【储存条件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次，有效期 12 个月。

【适用仪器】

ABI7500、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。

【标本采集】

血液标本：抽取动物静脉血 3 mL~5 mL 放入带盖的 EDTA 抗凝管中并做好标记送检。

动物组织标本：无菌操作取动物的肝、脾组织 2 g~5 g，放入无菌容器中，并标记取样日期及部位。土壤或粉末状标本：无菌操作用采样勺取 2 g~5 g  标本置于无菌容器中密封保存。

物体表面标本：采用无菌生理盐水湿润的无菌拭子擦拭物体表面(以 100 cm2 为宜)，放入无菌容器中保存。

【保存和运输】

上述标本在 2℃~8℃条件下保存应不超过 24 h；若需长期保存，应放置-70℃以下保存，冻融不超过 3 次。

【使用方法】

1.样品处理（样本处理区）

1.1样本前处理

血液标本：无需前处理，可直接用于 DNA 提取。

动物组织标本取 0.25 g 标本,加人 0.5 mL 无菌生理水，匀浆，静置 10 min,取上清液备用。

土壤或粉末状标本：取 0.25 g 标本，加入 0.5 mL 无菌生理盐水，振荡摇匀，静置 10 min，取上清液备用。

物体表面标本：采集的标本用 0.5 mL 无菌生理盐水洗涤，振荡摇匀，静置 10 min，取上清液备用。

1.2核酸提取

推荐采用上海晅科生物科技有限公司生产的核酸提取试剂（离心柱法）进行核酸提取，请按照试剂说明书    进行操作。

2.试剂配制（试剂准备区）

根据待检测样本总数，设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照；样品每满

10 份，多配制 1 份)，每测试反应体系配制如下表：

试剂Brucella 反应液酶液

用量19μL1μL

将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中，20μL/管。

3.加样（样本处理区）

将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀， 短暂离心。

4.PCR 扩增（核酸扩增区）

4.1将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内；

4.2设置好通道、样品信息，反应体系设置为 25μL；

荧光通道选择： 检测通道（Reporter Dye）FAM， 淬灭通道（Quencher Dye）NONE，ABI 系列仪器请勿选择

ROX 参比荧光，选择 None 即可。

4.3推荐循环参数设置：

步骤循环数温度时间收集荧光信号

11 cycle95℃2min否

245 cycles95℃15sec否

60℃30sec是

5.结果分析判定

5.1结果分析条件设定（请参照各仪器使用说明书进行设置，以分析 ABI7500 仪器为例）

反应结束后自动保存结果，根据分析后图像调节 Baseline 的 Start 值、End 值以及 Threshold 值（用户可根据实际情况自行调整，Start 值可设在 3～15、End 值可设在 5～20，使阈值线位于扩增曲线指数期，阴性质控品的扩增曲线平直或低于阈值线），点击 Analyze 自动获得分析结果。

5.2结果判断

阳性：检测通道 Ct 值≤40，且曲线有明显的指数增长曲线； 阴性：样本检测结果无 Ct 值，且无特异性扩增曲线；

可疑：样本检测结果 40＜Ct 值≤45，建议重复检测，如果检测通道仍为 40<Ct 值≤45，且曲线有明显的增长曲线，判定为阳性，否则为阴性。

5.3质控标准

阴性质控品：无特异性扩增曲线或无 Ct 值显示；

阳性质控品：扩增曲线有明显指数增长期，且 Ct 值≤32； 以上条件应同时满足，否则实验视为无效。

6.检测方法的局限性

1.样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；

2.样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；

3.阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；

4.病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；

5.不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；

6.试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；

7.本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。

【注意事项】

1.所有操作严格按照说明书进行；

2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完-全混匀并短暂离心；

3.反应液应避光保存；

4.反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；

5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；

6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；

7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；

8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。

【参考文献】

[1]王利清. 布氏杆菌病的诊断及防控[J]. 农业技术与装备, 2011.

[2]国家质量监督检验检疫总局. SN/T 1088-2010 布氏杆菌检疫技术规范[S]. 北京:中国标准出版社, 2010.

[3]GB/T 18646-2018,  动物布鲁氏菌病诊断技术[S].