一、操作步骤

 

　　1.准备实验材料：跨膜细胞电阻仪、细胞培养器、细胞培养基、胰酶、离心管、移液器等。

 

　　2.细胞培养：将细胞种植在细胞培养器上，加入适量的细胞培养基。将培养器放入37℃、5%CO2的培养箱内培养，直至细胞达到适当的传代比例。

 

　　3.装载细胞：将细胞悬液用胰酶消化后，计数并调整细胞浓度。将一定数量的细胞悬液加入到仪器的上室和下室中，确保细胞能够覆盖整个膜表面。

 

　　4.测量电阻：将仪器接入恒温水浴槽，保持温度在37℃。使用移液器轻轻搅拌下室中的细胞悬液，以消除浓度极化现象。记录初始电阻值。

 

　　5.数据分析：在一定时间内监测并记录电阻值的变化，计算电阻的相对增减率。分析数据，评估细胞层的紧密连接和屏障功能。

 

　　二、注意事项

 

　　1.选择合适的细胞株：不同类型的细胞株具有不同的生理功能和特性，因此在实验前需充分了解所选细胞株的特性，以确保实验结果的准确性。

 

　　2.维持适宜的培养条件：细胞的生长和分化受到诸多因素的影响，如温度、湿度、pH值等。在实验过程中，应严格控制这些条件，以保证细胞的正常生长。

 

　　3.避免污染：细胞培养过程中容易受到细菌、真菌等微生物的污染。因此，在操作过程中应严格遵守无菌操作规程，定期更换手套，并对实验器皿进行消毒。

 

　　4.确保仪器的准确性：在使用前，应检查仪器是否工作正常，测量电极是否洁净。测量过程中，应避免电极与细胞或细胞培养基直接接触，以免影响测量结果。

 

　　5.实验结果的可靠性：实验数据的准确性受多种因素影响，如操作误差、测量时间、细胞密度等。因此，在实验过程中应尽量减少误差，重复测量并取平均值，以提高实验结果的可靠性。