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Na+K+- ATP 酶活性检测试剂盒(可见分光光度法)

时间:2024-11-25      阅读:16

Na+K+- ATP 酶活性检测试剂盒(可见分光光度法)

产品货号:BA1037

 

产品规格:50/24

 

产品内容:

试剂一:液体30mL×1瓶,4℃保存。

试剂二:液体4mL×1瓶,4℃保存。

试剂三:粉剂×2支,-20℃保存。临用前用1mL蒸馏水溶解,现用现配。用不完的试剂-20℃可保存一周。

试剂四:液体2mL×1瓶,4℃保存。

试剂五:粉剂×1瓶,4℃保存。用时加入3mL双蒸水, 4℃保存。

试剂六:粉剂×1, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水,溶解后4℃保存一周。

试剂七:粉剂×1, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水,溶解后4℃保存一周。

试剂八:液体15mL×1瓶,室温保存。

标准品:10μmol/mL标准磷贮备液1mL×1支,4℃保存。

0.5μmol/mL 标准磷应用液配制:将标准品20倍稀释,即取0.1mL标准品加1.9mL蒸馏水充分混匀。

定磷剂的配制:H2O:试剂六:试剂七:试剂八=2:1:1:1的比例配制,配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染,定磷剂现用现配。

注意:配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿,避免磷污染。

 

产品说明

Na+K+- ATP 酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中,可催化ATP水解生成ADP和无机磷。

Na+K+-ATP 酶分解ATP生成ADP及无机磷,通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。

 

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

 

操作步骤

一、样品酶液的制备:

1、细菌、细胞或组织样品的制备:

细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL试剂一,超声波破碎细菌或细胞(功率20%,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

组织:称取约0.1g组织,加入1mL试剂一进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2、血清(浆)样品:直接检测。

二、测定步骤

1、可见分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至660nm,蒸馏水调零。

2、酶促反应(在EP管中加入下列试剂)


对照管

测定管

试剂一(μL

130

90

试剂二(μL

80

80

试剂三(μL

40

40

试剂四(μL


40

样品(μL


200

混匀,37℃(哺乳动物)或25℃(其他物种)准确水浴10min

试剂五(μL

50

50

样品(μL

200


混匀,4000g,常温离心10min,取上清液

 

 

 

 

 

 

 

 

3 定磷


空白管

标准管

对照管

测定管

0.5μmol/ml标准磷应用液(μL)


100



上清液μL)



100

100

蒸馏水μL)

100




定磷试剂μL)

1000

1000

1000

1000

混匀,40℃水浴10min,在660nm处,记录各管吸光值。

三、计算

1、血清(浆)Na+K+-ATPase活力的计算:

定义:规定每小时每毫升血清(浆)中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/mL= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷V÷T

=7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)

2、组织、细菌或细胞中Na+K+- ATPase活力的计算:

1)按蛋白浓度计算:

定义:规定每小时每毫克组织蛋白中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/mg prot)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷Cpr×V样)÷T =7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)÷Cpr

2)按样本鲜重计算:

定义:规定每小时每克组织中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/g鲜重)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷(V÷V样总×W)÷T=7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)÷W

3)按细菌或细胞密度计算:

定义:规定每小时每1万个细菌或细胞中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/104)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷(V÷V样总×500)÷T=0.015×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)

C标准管:标准管浓度,0.5μmol/mLV总:酶促反应总体积,0.5mLV样:加入样本体积,0.2mL V样总:加入试剂一体积,1mLT:反应时间,1/6小时;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:样本鲜重,g500:细菌或细胞总数,500万。

 

注意事项:

1、由于每一个样都必须做对照,本试剂盒50管保证测24Na+K+-ATP酶。

2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。

3、空白管和标准管各只要做一管。

 

Na+K+- ATP 酶活性检测试剂盒(可见分光光度法)

产品货号:BA1037

 

产品规格:50/24

 

产品内容:

试剂一:液体30mL×1瓶,4℃保存。

试剂二:液体4mL×1瓶,4℃保存。

试剂三:粉剂×2支,-20℃保存。临用前用1mL蒸馏水溶解,现用现配。用不完的试剂-20℃可保存一周。

试剂四:液体2mL×1瓶,4℃保存。

试剂五:粉剂×1瓶,4℃保存。用时加入3mL双蒸水, 4℃保存。

试剂六:粉剂×1, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水,溶解后4℃保存一周。

试剂七:粉剂×1, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水,溶解后4℃保存一周。

试剂八:液体15mL×1瓶,室温保存。

标准品:10μmol/mL标准磷贮备液1mL×1支,4℃保存。

0.5μmol/mL 标准磷应用液配制:将标准品20倍稀释,即取0.1mL标准品加1.9mL蒸馏水充分混匀。

定磷剂的配制:H2O:试剂六:试剂七:试剂八=2:1:1:1的比例配制,配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效,若是蓝色则为磷污染,定磷剂现用现配。

注意:配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器,也可以用一次性塑料器皿,避免磷污染。

 

产品说明

Na+K+- ATP 酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中,可催化ATP水解生成ADP和无机磷。

Na+K+-ATP 酶分解ATP生成ADP及无机磷,通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。

 

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。

 

操作步骤

一、样品酶液的制备:

1、细菌、细胞或组织样品的制备:

细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL试剂一,超声波破碎细菌或细胞(功率20%,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

组织:称取约0.1g组织,加入1mL试剂一进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。

2、血清(浆)样品:直接检测。

二、测定步骤

1、可见分光光度计或酶标仪预热30min以上,调节波长至660nm,蒸馏水调零。

2、酶促反应(在EP管中加入下列试剂)


对照管

测定管

试剂一(μL

130

90

试剂二(μL

80

80

试剂三(μL

40

40

试剂四(μL


40

样品(μL


200

混匀,37℃(哺乳动物)或25℃(其他物种)准确水浴10min

试剂五(μL

50

50

样品(μL

200


混匀,4000g,常温离心10min,取上清液

 

 

 

 

 

 

 

 

3 定磷


空白管

标准管

对照管

测定管

0.5μmol/ml标准磷应用液(μL)


100



上清液μL)



100

100

蒸馏水μL)

100




定磷试剂μL)

1000

1000

1000

1000

混匀,40℃水浴10min,在660nm处,记录各管吸光值。

三、计算

1、血清(浆)Na+K+-ATPase活力的计算:

定义:规定每小时每毫升血清(浆)中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/mL= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷V÷T

=7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)

2、组织、细菌或细胞中Na+K+- ATPase活力的计算:

1)按蛋白浓度计算:

定义:规定每小时每毫克组织蛋白中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/mg prot)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷Cpr×V样)÷T =7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)÷Cpr

2)按样本鲜重计算:

定义:规定每小时每克组织中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/g鲜重)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷(V÷V样总×W)÷T=7.5×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)÷W

3)按细菌或细胞密度计算:

定义:规定每小时每1万个细菌或细胞中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。

Na+K+-ATP 酶活力(U/104)= C标准管×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)×V÷(V÷V样总×500)÷T=0.015×A测定管-A对照管)÷A标准管-A空白管)

C标准管:标准管浓度,0.5μmol/mLV总:酶促反应总体积,0.5mLV样:加入样本体积,0.2mL V样总:加入试剂一体积,1mLT:反应时间,1/6小时;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:样本鲜重,g500:细菌或细胞总数,500万。

 

注意事项:

1、由于每一个样都必须做对照,本试剂盒50管保证测24Na+K+-ATP酶。

2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。

3、空白管和标准管各只要做一管。

 


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