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NIR-II激发抗淬灭苯硼酸改性共轭聚电解质增强化学光热疗效

时间:2024-09-11      阅读:101

本文要点:本文报道了一种多功能过氧亚硝酸盐(ONOO)纳米发生器(PBT/NO/Pt),用于NIR-II荧光(NIR-II FL)/NIR-II光声(NIR-II-PA)成像引导的化学/NIR-II PTT/ONOO联合治疗。多功能纳米发生器是通过将pH敏感的一氧化氮供体(DETA NONOate)和烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶触发超氧化物(O2)发生器化疗药物(CDDP)共同装载到NIR-II激发共轭聚电解质(PNC1BA)中而开发的。PNC11BA在聚合物骨架中具有非共轭烷基链段,在其侧链中具有丰富的带正电荷的苯基硼酸,这支持NIR-II FL的抗淬灭以及DETA-NONOTE和CDDP整合到PBT/NO/Pt中。在酸性肿瘤微环境中,CDDP和PNC11BA之间的配位键被切割,释放CDDP用于化疗活性。一氧化氮(NO)和O2的同时释放迅速导致原位产生更具细胞毒性的反应性生理氮物种ONOO。体外和体内结果证明,PBT/NO/Pt通过下调细胞内谷胱甘肽和增加CDDP-DNA加合物,对SKOV3/DDP肿瘤表现出显著的ONOO增强化学光热协同治疗作用。

活体成像

方案1. NIR-II光激发多功能ONOO−示意图纳米发生器 (PBT/NO/Pt) 用于 NIR-II FL/NIR-II PA 成像引导的协同 NIR-II PTT/化疗/过氧亚硝酸盐治疗


本文报道了一种NIR-II光激发多功能ONOO纳米发生器(PBT/NO/Pt)用于NIR-II FL/NIR-II PA成像引导的协同NIR-II PTT/化疗/过氧亚硝酸盐治疗(方案1)。PBT/NO/Pt是通过整合苯硼酸修饰的NIR-II共轭聚电解质(PNC11BA)、pH敏感的NO供体(DETA NONOate)和NOX触发的O2产生化疗药物(顺铂、CDDP)构建的。首先,将强电子供体(CPDT)和非共轭链段(C6)掺入聚合物主链中,并将阳离子苯硼酸基团与侧链结合,以产生NIR-II聚合物PNC11BA。与以前的NIR-II共轭聚合物相比,本文制备PNC11BA具有三个显著优势。首先,共轭聚电解质PNC11BA在1064 nm处表现出峰吸收和高NIR-II光热转换效率(PCE)值(53.65%),这使得PBT/NO/Pt适用于NIR-II PA成像和NIR-II PTT。其次,PNC11BA聚合物主链中含有C6链段,可以通过减少非辐射衰变,同时实现强大的NIR-II吸收消光系数和NIR-II荧光。第三,阳离子侧链PBA可以显著减少水环境中的聚集诱导猝灭(ACQ),当DMPC和DSPE-PEG2000–cRGD携带PNC11BA时,可以产生具有优异NIR-II荧光亮度的PBT/NO/Pt。最后,PNC11BA侧链上的苯硼酸基团将通过供体-受体相互作用提高DETA NONOate和CDDP药物在PBT/NO/Pt中的负载效率。体外研究表明,制备的PBT/NO/Pt能在酸性和高的NOXs浓度环境中释放NO和O2,并产生 ONOO。ONOO的原位生成通过下调细胞内 GSH 和增加 CDDP-DNA 加合物的水平,使耐药肿瘤对 CDDP 敏感。PBT/NO/Pt 还展示了明亮的 NIR-II FL 和 NIR-II PA 成像用于体内肿瘤诊断,以及协同治疗 NIR-PTT/ONOO用于体内抗癌应用。更重要的是,PBT/NO/Pt的显著NIR-II PTT和ONOO增强的化疗赋予了它们对DDP耐药SKOV3肿瘤的良好抑制作用。


方案2. 苯硼酸修饰NDCPEs的合成路线


通过强电子受体(BBTD)、电子供体(CPDT)和非共轭单元(噻吩-己烷,C6)之间的Stille偶联聚合,合成了三种掺杂共轭聚合物(NDCP)的非共轭链段,其共轭链段密度不同(方案2)。这些共聚物分别以2:1、1:1和1:2的C6:CPDT摩尔比生产,分别命名为PNC21、PNC11和PNC12。这些聚合物中的电子供体CPDT也具有溴化侧链,以允许侧链后官能化。如方案2所示,NDCP(PNC21、PNC11和PNC12)通过与二甲胺和PBA的两步反应转化为苯基硼酸修饰的非共轭链段掺杂共轭聚电解质(NDCPE:PNC21BA、PNC1BA、PNC12BA)。还合成了传统的CP(PCP)和苯基硼酸改性的共轭聚电解质(PCPBA),其中BBTD作为电子受体,CPDT作为电子供体。


图1. DCM中NDCPEs(PCPBA、PNC12BA、PNC11BA和PNC21BA)的特征


如图1a所示,NDCPEs(PCPBA、PNC12BA、PNC11BA和PNC21BA)溶解在二氯甲烷(DCM)(1.0 mg mL−1)中。图1b显示了DCM(0.1 mg mL-1)中NDCPEs的紫外-可见-近红外吸收光谱。所有四种NDCPE在800-1200nm处均表现出宽而强的吸光度。由于聚合物链中共轭长度的减少,从PCPBA到PNC21BA的聚合物骨架中的非共轭密度增加,吸收峰从1177 nm蓝移到925 nm。NDCPEs的光谱特性与NDCPs的光谱特性相似。如图1c所示,PCPBA、PNC12BA、PNC11BA和PNC21BA在1064 nm处的消光系数分别为0.908、1.331、0.922和0.823 L g−1 cm−1。DCM中聚合物在相同浓度下的NIR-II荧光光谱如图1d所示,掺杂PNC12BA、PNC11BA和PNC21BA聚合物的非共轭链段显示出类似的NIR-III发射光谱,并在1092 nm处有一个发射峰。相比之下,PCPBA没有NIR-II发射光谱。NIR-II发射强度随着聚合物链中非共轭C6密度的增加而增加,在相同浓度下,从PNC12BA到PNC21BA在1092nm处增加了2.7倍(图1e)。图1f中的NIR-II荧光成像结果显示,PNC21BA在相同浓度下发出的信号,是PCPBA的9.7倍。值得注意的是,当808 nm吸收强度归一化时,NDCPE的NIR-II荧光强度随着非共轭C6单元掺杂密度的增加而逐渐增加(图1 g)。PNC21BA发射峰的NIR-II荧光强度和成像强度分别比PCPBA强约3.7倍和6.4倍(图1h,i)。这些发现表明,在共轭骨架中掺杂非共轭单体可以提高共轭聚合物的NIR-II发射。


图2. NDCPEs NPs(PCPBA NPs、PNC12BA NP、PNC11BA NP和PNC21BA NP)的表征


先前报道的共轭聚合物表现出ACQ,并显著降低了NIR-II FL强度,使其难以用于生物医学成像应用。苯基硼酸修饰的NDCPE被包裹在两亲性脂质体(1,2-二肉豆蔻酰基-sn-甘油-3-磷酸胆碱,DMPC)中,通过纳米沉淀形成水溶性纳米粒子(PCPBA NPs、PNC12BA NPs、PN 11BA NPs和PNC21BA NPs)。还使用类似的方法制备了四种NDCPs NPs(PCP NPs、PNC12 NPs、PNC11 NPs和PNC21 NPs)进行比较。在溶液中,这些水溶性纳米粒子表现出颜色。如图2a所示,这些纳米粒子都具有980至1350 nm的宽NIR-II吸收光谱。相比之下,与PCP NPs、PNC12 NPs、PNC11BA NsP和PNC21BA NPs相比,PCPBA NPs、PNC12BA NPs、PNC11NPs和PNC21NPs红移。此外,在八个纳米颗粒的NIR-II荧光光谱中观察到差异(图2b,c)。只有NDCPEs NP表现出明显的NIR-II荧光,这表明NDCPEs在脂质体纳米颗粒中的聚集曲线可能较低,NIR-II发射也有所改善。更重要的是,NDCPE中非共轭链段密度的增加导致水溶性纳米颗粒的NIR-II FL强度更高,PNC21BA NPs的NIR-III发射强度(比PCP NPs强40.4倍)(图2d)。图2e、f中的NIR-II FL成像结果表明,PNC21BA NPs在相同浓度下发出信号,与PCP NP相比提高了14.8倍。同样,PNC21BA NPs在相同的808 nm吸光度下具有NIR-II发射强度。比较了PCPBA NPs、PNC12BA NPs、PN 11BA NPs和PNC21BA NPs在水溶液中的NIR-II荧光强度与DCM中相同浓度的PCPBA、PNC12 BA、PNC11 BA和PNC21B A的NIR-III荧光强度,以测量淬灭程度。PCPBA NPs在水溶液中的NIR-II FL强度达到DCM中聚合物水平的60%,表明NDCPE的NIR-III荧光大部分保留在纳米颗粒中,只有适度的淬灭。PNC21BA NPs的荧光为105%,而PCPBA NPs为60%,这支持了聚合物骨架中的非共轭片段减少NIR-II荧光淬灭的假设。这些结果还表明,通过调节聚合物骨架中非共轭链段的密度,可以微调NDCPEs NPs的NIR-II发射特性。NIR-II光学性质的差异表明,NDCPEs侧链中的阳离子PBA修饰通过两亲性脂质体之间的离子相互作用抑制分子间聚集,对NIR-II荧光有显著影响(图2g)。



图3. PBT/NO/Pt在水溶液中的表征


鉴于 PNC11BA 出色的 1064 nm 消光系数和 PNC11BA NPs 明亮的 NIR-II 荧光,研究者利用它们制备光疗剂。PNC11BA 侧链上的 PBA 基团很容易通过供体-受体配位负载顺铂 (CDDP) 和 NO 供体(DETA NONOate)。如图 3a 所示,通过常规沉淀实现了 PNC11BA、CDDP、DETA NONOate、DMPC 和DSPE-PEG2000-cRGD 的自组装,得到了多功能光疗纳米粒子 (称为 PBT/NO/Pt)。CDDP 被负载在这些纳米粒子上作为化疗药物和 NOX 活性 O2发生器。DETA NONOate 被选为 pH 响应的 NO 供体。制备了仅负载DETA NONOate 或 CDDP 或不负载 DETA NONOate 和 CDDP 的 PNC11BA NPs 作为对照(表示为 PBT/NO、PBT/Pt 和 PBT)。动态光散射 (DLS) 表明 PBT/NO/Pt 的流体动力学直径 (Dh) 为 66.64 nm,PDI低至 0.176(图 3b)。所得 PBT/NO/Pt 具有球形纳米颗粒,通过透射电子显微镜 (TEM) 测量其直径为 80 nm(图 3c)。能量色散 X 射线元素映射 (EDS) 显示 Pt 元素在纳米粒子中分布良好,表明 CDDP 负载成功(图 3d)。根据微孔板读数仪和电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS)获得的不同浓度的标准曲线,计算出DETA NONOate 和 CDDP 在 PBT/NO/Pt 中的负载效率分别为 5.42% 和 3.18%。

如图 3e 所示,水溶液中的 PBT/NO/Pt 在 800-1350 nm 处表现出强烈的 NIR 吸收,在 1064 nm 处的消光系数为 1.195 L g-1 cm-1。在水溶液中 808 nm 光激发下,PBT/NO/Pt 显示出强烈的 NIR-II 荧光,中心位于 1101 nm,长尾延伸至 1350 nm(图 3f)。NIR-II FL 强度在 60 分钟内几乎保持恒定(808 nm,0.5 W cm-2),表明 PBT/NO/Pt 具有光稳定性。图 3g 显示了不同浓度下 PBT/NO/Pt 的 NIR-II PA 图像。NIR-II PA 信号与 NPs 浓度表现出良好的线性关系(图 3h)。在 1064 nm 激光辐照(1.0 W cm−2)下验证了 PBT/NO/Pt 的光热性能。如图 3i 所示,水溶液的温度随 PBT/NO/Pt 浓度的增加而升高。例如,在 0.1 mg mL−1 PBT/NO/Pt 下,温度在 6 分钟内升高到 53 °C,PCE 计算为53.65%。此外,还忠实证明了 PBT/NO/Pt 在光热作用下的稳定性,在五次光开/关照射循环中,PBT/NO/Pt 溶液的温度变化小于 2 °C(图 3j)。

接下来探索了 PBT/NO/Pt 中 DETA NONOate 和 CDDP 的酸响应释放曲线。使用典型的 Griess 测定法来量化 pH 7.4 和 pH 5.5 水溶液中 DETA NONOate 的释放。如图 3k 所示,在 pH 7.4 下,90 分钟后PBT/NO/Pt 中 NO 的生成量最小。相反,在 pH 5.5 下,90 分钟后 NO 释放量超过 60 µm,反映了 DETA NONOate 和 PBA 基团之间供体-受体配位相互作用在酸反应下解离以及 DETA NONOate 降解。在酸反应下从 PBT/NO/Pt 中释放 CDDP 是此设计中的关键步骤,因为 CDDP 只能在弱酸性细胞内环境中激活 NOX 产生 O2。通过 ICP-OES 评估了 PBT/NO/Pt 中 CDDP 的释放情况(图 3l),结果表明 pH 值为 7.4 时,90 分钟后 CDDP 释放量可忽略不计,而 pH 值为 5.5 时,由于氨基和 PBA 基团的加速解离,CDDP 释放量超过 60%。这些结果表明,PBT/NO/Pt 中不利的 DETA NONOate 和 CDDP 泄漏在血液循环过程中可能受到限制,从而支持 NO 和 CDDP 在酸性肿瘤组织和癌细胞中的靶向释放。


图4. 细胞内生成 NO、O2 和 ONOO


图 4a 显示了细胞内 NO、O2和 ONOO的产生方式。首先通过共聚焦激光扫描显微镜 (CLSM) 和流式细胞术检查 PBT/NO/Pt 的细胞摄取情况。与载有 FITC 染料的 PBT/NO/Pt 孵育 1.5 小时后,在 SKOV3/DDP 细胞中发现大量绿色荧光。孵育时间延长至 3 小时后观察到更强的绿色荧光,表明 PBT/NO/Pt 进入细胞(图 4b)。鉴于已证实酸触发的 NO 生成和 CDDP 释放,随后监测细胞内 NO、O2和原位 ONOO形成。使用商用 NO 荧光探针(DAF-FM DA) 评估细胞内 NO 水平。如图 4c 所示,SKOV3/DDP 细胞与 PBT/NO/Pt 和 PBT/NO 孵育 3 小时后,由于DETA NONOate 在酸的作用下分解,观察到更强的绿色荧光。相比之下,PBT/Pt 和 PBT 处理的 SKOV3/DDP 细胞和对照表现出非常弱的荧光,表明这些纳米颗粒没有产生 NO。CDDP 在酸性细胞内环境中释放,然后催化 NOX s产生 O2。作者使用O2探针二氢乙锭 (DHE) 监测了 SKOV3/DDP 细胞中的细胞内 O2水平。如图 4d 所示,在PBT/NO/Pt 和 PBT/Pt 处理的SKOV3/DDP 细胞中观察到明显的红色荧光 (O2),表明细胞内 O2生成效率高。然而,由于缺乏 CDDP,在 PBT/NO 和 PBT 处理的SKOV3/DDP 细胞和对照中未检测到红色荧光。NO 和 O2结合产生 ONOO,因此,使用商业探针 BBoxiProbe O71 测量细胞内 ONOO。如图 4e 所示,与 PBT/NO 和PBT/Pt 一起孵育的 SKOV3/DDP 细胞分别由于缺乏 O2和 NO 而未显示出明显的绿色荧光。正如预期的那样,在与 PBT/NO/Pt 一起孵育的 SKOV3/DDP 细胞中观察到了绿色荧光,表明通过原位产生 NO 和 O2产生了丰富的 ONOO。通过流式细胞分析进一步定量统计研究了PBT、PBT/NO/Pt、PBT/NO和PBT/NO/Pt处理的SKOV3/DDP细胞内NO、O2和ONOO的生成情况(图4f,g),这与上述CLSM成像结果一致。




图5. 体外评价PBT/NO/Pt在SKOV3/DDP细胞中的抗癌活性及机制


PBT/NO/Pt 引发癌细胞中 NO、O2和 ONOO的形成。通过甲基噻唑基四唑 (MTT) 测定法测试了 PBT/NO/Pt 在 SKOV3/DDP 细胞中的抗癌作用。如图 5a 所示,PBT 处理组的细胞存活率略有下降。相反,在 100 µg mL−1下,PBT/Pt、PBT/NO 和 PBT + 激光处理的 SKOV3/DDP 细胞中的存活率分别下降至 79.1%、64.3% 和 49.8%。在所有组中,1064 nm 激光(6 分钟,1.0 W cm−2)处理的 PBT/NO/Pt 组表现出抑制作用(细胞存活率下降至 13.38%),证明了 PBT/NO/Pt 中 NIR-II PTT 和 ONOO的优异协同作用。还通过流式细胞术分析了 PBT/NO/Pt 诱导的细胞凋亡和坏死(图 5b),结果表明 PBT/NO/Pt + 激光组的细胞毒性,高凋亡率,约为 87%。相反,PBT/NO、PBT/Pt 和 PBT + 激光仅诱导中等程度的细胞凋亡。这些结果表明 PBT/NO/Pt 通过共递送 NO 和 CDDP 以及原位生成ONOO在 SKOV3/DDP 细胞中具有有效的抗癌活性(图 5e)。

为了直观地了解 PBT/NO/Pt 的治疗效果,通过 JC-1 染色评估了线粒体损伤。共聚焦成像和定量分析显示,PBT/NO/Pt + 激光治疗组出现了最亮的绿色荧光,表明线粒体膜电位丧失;流式细胞术也获得了类似的结果(图 5c、f)。PBT/NO/Pt + 激光组的细胞内 ATP 水平下降(约 30%),可能是由于线粒体功能受到抑制(图 5h)。使用 γ-H2AX(DNA 双链断裂的常规标记物)评估 PBT/NO/Pt 造成的 DNA 损伤程度。在 PBT/NO/Pt + 激光细胞中观察到最亮的绿色荧光,表明 CDDP-DNA 加合物有效形成,ONOO造成的 DNA 损伤更严重(图 5d、g)。随后,在SKOV3/DDP细胞中探究了PBT/NO/Pt的治疗机制。早先有报道称,CDDP可以形成Pt-GSH复合物并减少CDDP-DNA加合物的生成,从而诱导CDDP的解毒。用ThioTracker Violet测量了PBT/NO/Pt形成ONOO−对SKOV3/DDP细胞内GSH的影响。在图5i中,在空白对照和PBT、PBT/NO和PBT/Pt处理的SKOV3/DDP细胞中观察到明亮的绿色荧光。相比之下,PBT/NO/Pt+激光处理的SKOV3/DDP细胞显示出明显较少的绿色荧光,表明GSH含量损失。流式细胞术和定量分析也得到了类似的结果,表明PBT/NO/Pt+激光降低了细胞内GSH(图5j)。因此,ONOO下调细胞内 GSH,从而改善 CDDP 与靶DNA 的结合并促进癌细胞凋亡。

通过蛋白质印迹法研究了相关蛋白(Pro-caspase-3、Bcl-2、γ-H2AX和 GS)的表达(图 5k、l、m)。在用 PBT/NO/Pt 和 1064 nm 光处理的 SKOV3/DDP 细胞中,裂解的 caspase-3 表达显著诱导,Bcl-2 下调,表明更多细胞开始凋亡(图 5k、l)。正如预期的那样,γ-H2AX和 GS 的表达与之前的结果一致,解释了为什么PBT/NO/Pt + 激光照射会造成更严重的 DNA 损伤。这些结果证实,原位 ONOO−生成下调了细胞内 GSH,增加了 CDDP–DNA 加合物和裂解的 caspase-3 的水平,从而促进了细胞凋亡。


图6. SKOV3/DDP 荷瘤小鼠体内 NIR-II FL、NIR-II PA 和光热成像


研究了 PBT/NO/Pt 的体内抗癌效率。在体内实验之前,通过 NIR-II FL 和 NIR-II PA 成像系统可视化了肿瘤部位的 PBT/NO/Pt 积累。SKOV3/DDP 肿瘤异种移植小鼠接受静脉注射 PBT/NO/Pt(150 µL,2.0 mg mL−1),并在注射后 0.1、6、12、24 和 36 小时获取图像。如图 6a、c 所示,肿瘤部位的 NIR-II FL 和 NIR-II PA 信号在 6 小时时变亮,并在 24 小时达峰值。通过上述实验得出结论,NIR-II FL 和 NIR-II PA 成像可以为 1064 nm 激光治疗提供精确指导。图 6b、d 显示了肿瘤部位的定量成像分析,其中 NIR-II FL 和 NIR-II PA 中的成像强度分别比注射前高 7.3 倍和 9.4 倍,表明 PBT/NO/Pt 通过增强渗透性和保留 (EPR) 效应在肿瘤部位积累。注射后 24 小时,获得了肿瘤和主要器官的 NIR-II FL 和 NIR-II PA 图像。离体数据显示,肿瘤部位积累的 PBT/NO/Pt 比其他组织(包括代谢器官)更多。此外,在注射 PBT/NO/Pt 后 24 小时对肿瘤部位进行了典型的体内光热成像(图 6e、f)。1064 nm 激光照射(1.0 W cm−2)后肿瘤温度逐渐升高,并在约 6 分钟时达到峰值 53 °C。在用 PBS 治疗的肿瘤小鼠中,没有检测到明显的体温升高。


图7. 对SKOV3和SKOV3/DDP肿瘤小鼠的体内肿瘤抑制作用


在两种皮下肿瘤模型(SKOV3 和 SKOV3/DDP 异种移植裸鼠)中评估了 PBT/NO/Pt 的体内癌症抑制作用。荷瘤小鼠随机分为六组:(I)对照组、(II)PBT、(III)PBT/Pt、(IV)PBT/NO、(V)PBT + 激光和(VI)PBT/NO/Pt + 激光。静脉注射 PBS、PBT、PBT/Pt、PBT/NO 或 PBT/NO/Pt(150 µL,2.0 mg mL−1)后,每 2 天监测一次肿瘤大小。注射后 24 小时,PBT + 激光和 PBT/NO/Pt + 激光组的肿瘤部位暴露于 1064 nm 激光(1.0 W cm−2)照射 6 分钟。如图7a所示,15 天后,与对照组(肿瘤体积增加 10.2 倍)相比,PBT/Pt 表现出非常弱的抗癌效果(肿瘤体积增加 7.4 倍)。PBT/NO 和 PBT + 激光组的肿瘤体积分别增加了 7.0 倍和 5.2 倍,表明单一 NO 气体和 NIR-II PTT 疗法比 PBT/Pt 提供更好的肿瘤生长抑制效果。与此形成鲜明对比的是,由于 Pt、NO 和 NIR-II PTT 以及ONOO爆发的协同作用,PBT/NO/Pt + 激光产生了肿瘤抑制能力。15 天后,从每组中切除肿瘤并成像(图 7b)。还记录了收集的肿瘤的重量和体积。对照组、PBT组、PBT/Pt组、PBT/NO组、PBT+激光组和PBT/NO/Pt+激光组的平均肿瘤重量分别为1.16、1.12、0.89、0.80、0.60和0.10 g,证明了1064 nm激光照射后PBT/NO/Pt具有显著的抑癌活性(图7c)。图7d-f说明了PBT/NO/Pt+激光对SKOV3/DDP荷瘤小鼠的突出癌症抑制作用。进一步检测到第15天分离的SKOV3肿瘤中凋亡相关蛋白(Pro-caspase-3、Bcl-2、γ-H2AX和GS)的表达(图7g、h、i)。与之前的结果一致,PBT/NO/Pt+激光下调了GSH,导致更严重的DNA损伤,并抑制了肿瘤的生长。

为了探索 PBT/NO/Pt 的肿瘤抑制能力,通过苏木精-伊红 (H&E) 染色、末端脱氧核苷酸转移酶 dUTP 缺口末端标记 (TUNEL) 染色、免疫组织化学 (Ki-67 抗体染色) 和 γ-H2AX 免疫荧光染色分析了组织切片。如图 7j 所示,PBT/NO/Pt + 激光诱导凋亡反应、肿瘤抑制和 DNA 损伤,验证了 PBT/NO/Pt 的放大治疗效果。这些结果表明,PBT/NO/Pt 共同递送的 CDDP 和 DETA NONOate 通过产生 ONOO− 以及 Pt、NO 和 NIR-II PTT 的协同作用导致 DNA 损伤和细胞凋亡。

在这项工作中,开发了一个光疗平台 PBT/NO/Pt,并展示了临床应用潜力的几个优势。共轭聚合物 PNC11BA 具有内在的生物相容性,可以通过合理设计聚合物主链实现生物降解性。PBT/NO/Pt 对肿瘤微环境中表达的酸性和高 NOX 表现出优异的选择性和敏感性,有利于消除具有多药耐药性的癌症。 PBT/NO/Pt具有优异的光稳定性和胶体稳定性。


本文构建了一种 NIR-II 光触发多功能 ONOO 纳米发生器 (PBT/NO/Pt),用于在 NIR-II FL/NIR-II PA 成像引导下进行协同 NIR-II PTT/化疗/过氧亚硝酸盐治疗。PBT/NO/Pt 在 1064 nm 激光辐照下表现出强 NIR-II 吸收、优异的 NIR-II 荧光发射、强烈的 NIR-II PA 信号和优异的 PCE (η = 53.65%)。此外,PBT/NO/Pt 到达肿瘤部位,肿瘤微环境中的酸性和高浓度 NOX 使 NO 和 O2 同时释放,随后原位形成 ONOO。这种原位生成 ONOO 通过下调细胞内 GSH 和增加 DNA 损伤对SKOV3/DDP 细胞具有显着的抗癌作用。体外和体内研究表明,在 ONOO 和化疗增强的 NIR-II PTT 下,PBT/NO/Pt 具有显著的抗 SKOV3 和 SKOV3/DDP 肿瘤抑制作用。因此,开发的 NIR-II 光激发多功能 ONOO纳米发生器是治疗耐药性肿瘤的一种有前途的策略。


参考文献

Sun P, Hu D, Chen P, et al. Anti‐Quenching NIR‐II Excitation Phenylboronic Acid Modified Conjugated Polyelectrolyte for Intracellular Peroxynitrite‐Enhanced Chemo–Photothermal Therapy[J]. Advanced Science, 2024: 2309446.


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