小鼠主动脉平滑肌细胞分离培养方法
时间:2022-11-08 阅读:502
小鼠主动脉平滑肌细胞分离自主动脉组织;主动脉是体循环的动脉主干。其运行路径为:升主动脉起于左心室,至右侧第2胸肋关节高度移行为主动脉弓,弓行向左后至第4胸椎体下缘移行为降主动脉;在第12胸椎体高度穿膈的主动脉裂孔移行为腹主动脉,以上为胸主动脉,至第4腰椎体下缘分为左、右髂总动脉;髂总动脉在骶髂关节高度分为髂内、外动脉。主动脉平滑肌细胞原代分离培养3天后,可见细胞贴壁伸展,细胞形态大小不一,呈梭形、不规则形、三角形或扇形,核卵圆形、居中;2周后细胞汇合,多数细胞伸展呈长梭形,胞浆丰富,有分枝状突起,细胞平行排列成单层或部分区域多层重叠生长,高低起伏;细胞密度低时,常交织成网状;密度高时,则排列为旋涡状或栅栏状。传代后细胞生长较快,4-6天即可汇合,并保持上述形态学特征和生长特点。主动脉平滑肌细胞在心血管疾病发生、发展中具有重要作用,以主动脉平滑肌细胞为实验研究对象,探讨心血管疾病相关发病机制是目前研究的热点;体外培养的主动脉平滑肌细胞对于研究其生理功能、药物作用以及各种致病因素作用下的病理生理改变具重要意义。
小鼠主动脉平滑肌细胞分离培养方法:
1)取材:颈椎脱臼处死小鼠,在75%乙醇中浸泡2min,用眼科剪镊依次打开胸、腹腔,暴露心脏;10mL注射器抽取无菌PBS约10mL,连接在1mL注射器针头上穿刺左心室,冲洗主动脉。完整分离主动脉,放入35mm平皿中,加入2mL PBS缓冲液。在体视显微镜下小心将血管周围的结缔组织去除,使用显微弹簧剪沿主动脉纵轴剪开动脉,用显微镊子小心分离动脉中膜层并移入另一个含有2mL含20%FBS的DMFM/F12培养液的35mm平皿中,迅速转移至超净台。用眼科剪将中膜剪成大小约1mm×1mm的组织块,备用。
2)组织块培养法:将组织块连同培养液一起移入6孔板中,小心吸出培养液,摇晃6孔板,使组织块分散分布于6孔板底,将细胞移入5%CO2,37℃饱和湿度培养箱中孵育6h,使组织块牢固贴附于培养孔底部后缓慢加入2mL含20%FBS的DMEM/F12培养液。放入5%CO2,37℃饱和湿度培养箱中培养,每3d换液一次,组织块周围爬出的细胞达到培养面积80%时(18~20d)进行传代。
3)胶原酶消化法:将剪碎的组织块移入到15mL离心管中,加入3mL消化液(7.5mgII型胶原酶溶于5mL含20%FBSDMEM/F12中),放入培养箱中消化6h,1200r/min离心5min,去掉上清,加入2mL含20%FBSDMEM/F12培养基,轻轻吹打分散细胞,接种于6孔板中,置于5%CO2,37℃饱和湿度培养箱内培养,当细胞生长至80%汇合度(7~10d)即可传代。
4)细胞的生长及传代:吸取并弃掉旧培养基,加入PBS磷酸缓冲液清洗细胞充分洗去残留的血清成分;6孔板每孔加入0.25%胰蛋白酶500μL,在37℃消化3min;倒置显微镜下观察到细胞收缩变圆时,立即加入含FBS的培养基终止消化,将细胞从培养板底冲洗下来,以1:3的比例传代至新的6孔板中。每2d换液1次,待细胞生长达到70%以上汇合度时再次传代。
5)小鼠主动脉平滑肌细胞鉴定:分别对2种方法分离的3代和8代细胞进行免疫荧光鉴定。待细胞处于指数生长期时,弃培养基,加入PBS缓冲液清洗3次,每孔加入1mL4%多聚甲醛,室温固定20min;PBS洗3次,加入0.25%TritonX-100室温透膜1h;PBS洗3次,加入含10%山羊血清PBS的封闭液室温封闭1h;PBS洗3次,加入羊抗鼠α-SMA一抗(1:200稀释),4℃孵育过夜;PBS洗5min×3次;加入Alex488兔抗羊二抗(1:1000稀释)4℃孵育过夜;避光下PBS洗5min×3次;加入DAPI染核,室温避光10min,PBS洗5min×3次;在倒置荧光显微镜下观察。
6)结果:采用组织块培养法的细胞8d左右可见细胞从组织块周围爬出,培养12d左右组织块周围细胞明显增多,细胞中可见1个或数个核仁,细胞主要为长梭状、带状或三角状,部分细胞有突起胞核位于细胞中央(图1A)。培养18d左右细胞达到80%汇合度。采用胶原酶消化法分离的小鼠主动脉小鼠主动脉平滑肌细胞于24h后完全贴壁,胞质完全伸展,第4~7d细胞增殖速度加快(图1B),生长7d后细胞汇合度可达80%以上,细胞致密呈多层典型"峰-谷"结构出现。