酶联免疫吸附测定（ELISA）因其具有敏感性高、特异性强等优点，被广泛应用于临床检测中的各种抗原和抗体的测定。尽管 ELISA 操作简单，但是小实验里也蕴含着大文章，ELISA 操作各个环节对实验的检测效果影响较大，稍不注意就会产生假阳性或假阴性的结果。现在就跟大家 818 应用 ELISA 应该了解的一些常识。

ELISA 分类及具体过程 

一般，ELISA 可分为以下四大类：直接 ELISA、间接 ELISA、夹心 ELISA、竞争抑制 ELISA。其他的 ELISA 都隶属于这四类 ELISA 或由这四类 ELISA 组合衍生。下面分析 ELISA 实验操作中可能影响结果的原因，并给出相应的解决方法。

样品收集和保存 

用于 ELISA 测定较为常用的临床标本是血清（浆）。要注意避免严重溶血，因为血红蛋白中含有具有类似过氧化物活性的血红素基团，在孵育时很容易吸附于固相，与 HRP 底物反应产生假阳性。 

样品采集及血清分离中要注意避免细菌污染，一方面细菌分泌的酶可能对抗原抗体等蛋白产生分解作用，另一方面，细菌的内源性酶如大肠杆菌的 β-半乳糖苷酶会对相应酶作标记的测定方法产生非特异性干扰。 

样品应该要避免反复冻融。因反复冻融所产生的机械剪切力对标本中的蛋白等分子产生破坏作用，从而引起假阴性结果。另外，样品混匀时，不要剧烈振荡，反复颠倒混匀即可。 

一般而言，如果在收集样品的当天进行检测，可将样品及时储存在 4℃备用；而对隔天再检测的样本，应及时分装后冻存在-20℃备用，若要长期保存样品，最好将其置于-70℃冻存。

试剂准备 

在实验开始前，需将试剂盒从冰箱中拿出来在室温放置 20min，再进行测定，以使试剂盒在 使用前与室温平衡，也可使温育时反应孔内的温度能较快的达到所要求的高度，以满足测定 要求。 

其次，目前商品中 ELISA 试剂盒中的洗板液均需在实验过程中对其所提供的浓缩液进行稀释 配制，因此稀释时所用的蒸馏水或去离子水应该保证质量。此外，底物反应液应该反应显色 前进行现配现用。同时，为了保证实验的均一性，实验中所有试剂在加样前必须摇匀。

加样 

因 ELISA 的灵敏度较高，则应该按规定将血清稀释至适当的倍数，以降低非特异性反应，使特异性的抗原抗体反应充分体现出来。 

加样品时，单孔用量要求：≥20ul/指标，如需要做 2 个复孔则血量≥60ul/指标。如果用量充足，最好提供 50ul/孔/指标。具体用量也需根据试剂盒的要求而定。 

吸取样品时，加样枪头不应粘附多余的液体；加样时不可 90 度向孔中滴加液体，否则会导致液体残留在吸头上，加样不准确。正确加样方法应为 45 度，吸头贴着孔壁和液面的交界处加入。

加样时速度不可过快，否则无法保证微量加样的准确性和均一性；要避免样品加在孔壁上部而产生非特异性吸附。不可将样品溅出以避免对邻近孔产生污染。

孵育 

一般，孵育时间与温度成反比，即温度越高，所需时间相对较短。较为常用的孵育温度为 37℃，孵育 1-2h。 

孵育时应贴封片或加盖，避免样品或稀释液蒸发，吸附于孔壁，难于清洗。孵育时，反应板不宜叠放，以保证各板的温度都能迅速平衡。同时，应严格控制孵育时间，避免因时间过长导致紧附于反应孔周围的非特异性结合。 

孵育时，要尽量排除“边缘效应”，即 96 孔板的外周孔显色较中心孔深。究其原因，是因为 96 孔板周孔与中心孔的表面或热力学特征不同。因此，可采用水浴或在将反应溶液加入至板孔中时，将板和溶液均加热至孵育温度（37℃）。

洗板 

为了确保 ELISA 测定的特异性，洗板可清除非特异性结合物质，减少背景信号，增加分析的信噪比。 

手工洗板时，拍板要垂直，避免交叉污染，用力不能过猛，防止抗原抗体复合物脱离。使用半自动洗板时，应经常检查冲洗头是否通畅，若被杂物堵塞时可用注射器针头挑出。为了达到较好的洗涤效果，实验室可采用机器与人工洗涤相结合的方法，即在机器洗涤后再进行人工洗板 1-2 次。

以 HRP 作为标记酶的 ELISA 试剂盒中使用的洗板液一般为含 0.05% Tween20 的中性 PBS，其中，吐温 20 的浓度可在 0.05%-0.2%之间，高于 0.2%时，可使包被在固相上的抗原或抗体解吸附而减低实验的灵敏度。

显色 

目前以 HRP 作为标记酶的商品 ELISA 试剂盒中，如以 TMB 为底物，则提供的底物为 A 和 B 两瓶应用液；如以 OPD 为底物，则试剂盒提供 OPD 片剂或粉剂，临用前配制。显色剂配制后放置时间过长（肉眼可见浅蓝色的 TMB 时）要弃之不用。 

在加入底物开始显色反应前，最好是先检查一下底物溶液的有效性，即可将 A 和 B 两种液各加一滴于清洁的空板孔或 eppendorf 管中，观察是否有显色出现，如有，则说明底物已变质。 

显色反应条件一般为 37℃或室温反应 15-30 分钟。加终止液时，要避免气泡产生而引起的假阳性。

读板 

读板时要保证酶标板清洁，同时也要注意酶标仪的波长是否已调至合适或所用滤光片是否正确。 

通常，单波长读板的测定值一般是指以对显色具有最大吸收的波长如 450nm 或 492nm 进行比色测定；而双波长读板的测定值一般是敏感波长如 450nm 的吸光值与非敏感波长下如 630nm 的吸光值之差，可排除板内脏物的影响。 

同时，由于 ELISA 测定中单个空白孔的非特异吸收上有一定程度的不确定性，也就是说每次测定或同次测定空白孔位置的不同均有可能得到不同吸光度测定值，故而在 ELISA 测定比色时，最好是使用双波长比色。

数据结果分析 

ELISA 的测定结果可分为两种：定性测定和定量测定。前者只需确定阴性或阳性即可；后者则需要给具体的数值。在定量测定中，经常要将标准品所获得的吸光值进行标准曲线的绘制。 

下面则简单介绍用 excel 绘制标准曲线的方法 

1）输入相应数据

2）选中相应数据

3）选择表格中，菜单栏中的插入|散点图中第一个类型

4）选中“图表工具”中的“快速布局”中 fx 图标，即可得到以下图表。Excel 版本较低的可以直接跳到第 6）步。

5）点中坐标轴标题，可做修改。修改后可获得以下标准曲线。

6）或者在较低版本的 excel 中，在“图表工具”选项中，选择趋势线|线性趋势线。

7）选中图表中的趋势线，右键，选择“设置趋势线格式”，在弹出的对话框中，将“显示公式” 勾选上，点击关闭，也获得标准曲线。

8）可将试验管中所测的吸光度值代入图表中的公式 Y=1.001x+0.0171 后可得到所求成分的含量，即 X 的值。

ELISA 的疑难杂症 

1）显色浅，灵敏度低

2）假阳性多，本底高甚至花板

3）重复性不好

4）白板