原代细胞分离培养是一项实验技术，它涉及从生物体中提取组织或细胞，并将它们转移到体外环境中进行培养。这些来源包括各种组织器官、外周血和胚胎等。在培养过程中，原代细胞的生长速度相对较慢，通常在培养的前10代内停止生长。因此，通常将培养的细胞归类为原代细胞培养，这些细胞包括第1到第10代的细胞。下面让我们一起来看看原代细胞分离的注意事项与常见问题吧！
 

　　一、常见问题：
 

　　1. 保存血清好的方法是什么？
 

　　建议将血清存放在 -5℃ 至 -20℃的温度范围内。如果存放在4℃，请不要超过一个月。如果无法一次使用完整瓶血清，建议将血清经过无菌分装后存放在适当的灭菌容器中，然后再放回冷冻。
 

　　2. 如何解冻血清以保持其最佳培养状态？
 

　　建议将血清从冷冻箱中取出后，首先放置在2～8℃的冰箱中使其融化，然后在室温下使其融化。但务必要注意，在融解过程中必须规律地摇晃以确保均匀。
 

　　3. 血清解冻后发现有絮状沉淀物出现，应该如何处理？
 

　　血清中出现沉淀物有很多原因，但最常见的是由于血清中脂蛋白的变性所致。此外，血清解冻后血纤维蛋白的存在也可能导致沉淀物的生成。
 

　　1. 通过使C57BL/6小鼠颈椎脱臼死亡，然后用适量的酒精喷洒和Buffer滴加的方式，快速分离结肠。
 

　　2. 沿着肠系膜进行剪开，利用DMEM培养基清洗结肠，以去除其中的肠腔内容物。
 

　　3. 使用无菌剪刀将结肠组织剪成约1mm³大小的碎片。
 

　　4. 使用10 mL 0.1%胶原酶I和3%分散酶II对组织进行消化，在37℃的摇床上消化25分钟。
 

　　5. 进行吹打混匀，并通过100μm细胞过滤器过滤，以收集上清液。
 

　　6. 采用相差消化法和差速贴壁法去除成纤维细胞。
 

　　7. 加入1 mL培养基，将细胞悬浮后接种于含有培养基的培养瓶中，在37℃、5% CO2的细胞培养箱中培养。
 

　　8. 当细胞生长至培养瓶的80-90%时，使用5 g/L胰酶消化液进行消化，然后将其接种于细胞培养板中。
 

　　二、注意事项：
 

　　原代细胞培养具有较高的成本，并对培养条件有严格要求。因此，在培养过程中需要特别注意保持无菌环境，并尽可能去除目标细胞以外的其他细胞。
 

　　1. 在实验开始前，必须对所有器械进行消毒处理，并进行高压灭菌，液体则需要进行无菌过滤处理。
 

　　2. 酶消化液必须立即现用现配，以确保其活性。
 

　　3. 在实验过程中，需要充分消化组织以确保检测到足够数量的细胞。
 

　　4. 同时，也要尽可能充分去除成纤维细胞。
 

　　5. 在后续的培养过程中，必须保持全程无菌操作，以确保培养环境的纯净性。
 

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