喆图小编今天来讲讲细胞传代的操作步骤：需要准备的器材：酒精喷壶、PBS缓冲液、胰酶、培养基、巴氏吸管、水浴锅、移液器、离心管、超净台、CO2培养箱、离心机等。

        然后我们要把我们准备的器材放入超净台，打开紫外杀菌灯灭菌，需要注意的是若培养的细胞对温度比较敏感，将培养基瓶子放入37℃的水浴锅中，使得培养基温度在37℃，再转移到超净台紫外灭菌，当然一般的细胞对培养基的温度不是很敏感，不用对培养基加温也是可以的。细胞培养间也需要紫外照射半小时左右。

        接下来小编就开始来操作了，全程严格无菌操作！

        1、紫外照射灭菌后，穿好灭菌服，戴好灭菌手套和口罩。

        2、从CO2培养箱中取出细胞培养瓶，用酒精喷壶在培养瓶表面喷洒75%酒精消毒，转移培养瓶到超净台。

        3、打开盖子，轻轻吸出旧的培养液，用巴氏吸管加入适量PBS缓冲液洗涤1-2次，弃去PBS缓冲液。

        4、可用移液器加入2-3ml胰酶，“十字”晃动，使胰酶充分接触细胞。

        5、将加入胰酶的细胞培养瓶转移到倒置显微镜载物台，镜下观察细胞消化情况，当细胞变圆且大量脱落时，准备终止消化，用75%的酒精喷洒培养瓶表面，转移到超净台

        6、用移液器加入等量含血清培养基，终止消化。移液器充分吹打，使细胞能够*脱落。

        7、将培养瓶中混合液体转移至离心管中，配平，离心5分钟左右。

        8、离心好后，用酒精喷壶喷洒离心管表面，转移进超净台，打开盖子，将上清液倒入废液缸。

        9、加入适量体积含血清培养基，用移液器或巴氏吸管轻轻吹打，制成细胞悬液。

        10、将细胞悬液分装进3个洁净灭菌培养瓶，加入适量培养基，盖好盖子

        11、将分装好的培养瓶置于倒置显微镜载物台，观察细胞情况，细胞应保证一定数量，数量太少会影响生长情况。

        12、在培养瓶上做记号，注明传代时间，细胞种类，操作人员等信息。在放入CO2培养箱之前应再次用酒精喷一喷培养瓶表面，然后整理操作台，用75%酒精擦拭超净台台面，清理废液和垃圾。

        以上内容仅供参考，如需了解请联系喆图客服！