一、 概述：
我们同行都知道大鼠尾静脉注射是一件很不容易的事，因其皮厚有鳞血管深，动物凶猛难绑定。大家一致认为给大鼠尾注没有任何可投机取巧的方法，只能多练习，找手感、积累经验、熟能生巧，其实不然，初学者要想打好大鼠尾静脉注射只要掌握住这三条就能打好，一是要把动物牢固保定，二是让动物血管充分充盈，三是知道针是否进入了血管。如果这三条都做到了，那么大鼠尾注还困难吗？其实我们就是针对这三个问题研发了大鼠静脉可视尾注固定器：一、使用了李氏快装鼠筒，装鼠速度快、保定牢固、鼠位舒适，不会前窜，保证了注射时的稳定。二、使用赶压方式将鼠尾尾根部分血管中的血赶压到鼠尾的后半部分，使其血管充分充盈，方便针头的进入。三、使用特殊的黄光照射鼠尾，使鼠尾的血管显现出来，在可视的情况下使针尖刺入，做到有的放矢，不再是单凭手感的盲打，（针是否进入血管，摆动针头看血管是否跟着动就知道针是否在血管中）不再追求那种针进血管中的落空感（其实这种手感，一般短时间内很难体会出来）。这三个问题都解决了，我们将*地从尾注的烦恼中解放出来。我们这款尾注固定器针对这三个问题，经过三年的潜心研究，用新思维、新理念，精心设计制造出来了，这款小型仪器它将用新的原理和新的操作方式让使用者耳目一新。这也将成为鼠尾静脉注射道路上的一个重要里程碑。
二、主要技术指标：
李氏快装鼠筒可盛装150-450g的大鼠
装小于220g的鼠时筒内应加装内衬
10W LED 黄光灯
配带上压块释放脚踏开关
配有使鼠尾血管充盈的压块
电源适配器：输入：AC100-220V 50Hz
输出：DC 12V 2A
整机尺寸：350 * 210 * 200 mm
整机重量：3.5 Kg
三、使用方法：
（一）连接
1.接通电源：将电源适配器分别连接电源和仪器上，接通后主机面板的绿色指示灯亮。
2.连接脚踏开关：将脚踏开关插头插接在主机箱上。（注：脚踏开关不连接，上压块无法吸合）
3.连接鼠尾透视灯：将L型鼠尾托架上的灯线插头插在主机箱相应的插座上，按动前面上的黄色按钮，黄色灯应亮。
（二）装鼠
1.快速装鼠筒的使用：装鼠筒一改过去那种大鼠钻入式的装鼠方式，（大鼠钻入式的装鼠方式使用还可以，动物在不知的情况下，很容易进入，但动物经过几次后知道进入的不适感觉，再让其进入就较困难了。）快速装鼠筒是后拉尾式装鼠方式，箕型的鼠筒前端能顺利地将鼠拉入筒内，为了避免鼠在筒内滚转身体，筒内安装了腹部限位块，能有效地限制大鼠身体在筒内翻转，大鼠被拉入筒后，可用前堵头将其堵在里面，前堵头的孔是根据大鼠头骨的生理曲线设计的，能有效地控制鼠的头部，但又不影响正常的呼吸，同时还能让大鼠的前肢找到一个舒适的位置，堵头的固定位置应以动物不能自由活动但又不影响动物肺部扩张，正常呼吸为准（通过透明的有机玻璃可观察调整），注：装小于220g的鼠时筒内应加装内衬，装大于220g的鼠时应取出内衬。
2.装好鼠的筒放置于主机上面板的滑槽上，鼠筒应侧放（因静脉血管在鼠尾的两侧），定位销进入定位孔，将鼠尾通过开口的档板放置在鼠尾挤压板下板的沟槽里，按动前面的黄色按钮，黄色灯亮，观察鼠尾血管是否摆正，再按一下黄色按钮，关闭黄灯，随后将鼠尾上压块顺时针 90°压下，直到听到清脆的吸合声才可松手，此时鼠尾已被压住，按压时应缓慢加力，为让鼠尾根部的血液，有时间挤压到鼠尾的梢部，在下压的同时黄光灯自动点亮，这时可以根据黄光透射血管的情况调整黄光亮度旋钮，使血管达到最清楚（环境的亮度变化会影响血管的显现情况，建议在较暗的室内操作，应避开强光直射）。
3.托尾槽宽度的调整：由于鼠的大小不同和注射位置的不同，鼠尾的粗度、直径有较大的变化，所以应及时地调整托尾槽的宽度，托尾槽的宽度以鼠尾能放入2/3为准，这样鼠尾可以紧贴光灯，使尾静脉显示的更清楚，固定鼠尾更稳定。
4.前支脚调整：为了方便注射，静脉可视大鼠尾注固定器应有一定的倾斜度，固定器前端机脚可调整斜度，一般以机脚全部拧出为最佳使用角度，也可根据个人使用习惯或调低或加高。
5.注射位置的调整：不管使用多重的大鼠均应从鼠尾部的下1／3处进针，这样逐渐由下向上打可避免打过的针眼出现漏液现象。因使用动物的品系、大小不同，尾长度也不同，这样就需要调整注射时的位置，其方法是松开左边L型鼠尾托架调整紧固螺丝，拉动L型鼠尾托架至合适位置后旋紧即可。
6.遮光罩的使用：遮光罩是为了遮住外界的光线，造成局部变暗有利于观察血管，能更清楚地看到尾静脉血管和针头进入的情况。如果外界的光线不是很亮可以不使用遮光罩，打开放在一边，遮光罩是软性的不会影响到其他操作。
7.注射：注射使用的针头应在7号针以下，6号较为合适，过粗的针对血管损伤过大，用后止血困难。目前也有用头皮针后接1毫升注射器用的。这还是为了看回血情况来判断是否进入血管，不管用什么样的针，重要的一点是能看到血管，同时又能看到针在哪里了，这样注射就很容易了，针头进入血管后针头左右摆动一下看血管是否跟着动，这是判断进入血管的最好方法。
确定针进入血管后，踏动脚踏开关，鼠尾上压块上行逆时针转动90°打开，这时就可以将药物推入静脉，推入时应缓慢，这样可避免动物出现充血性心衰。注射完成后应用棉球按压针孔处半分钟以上，或用止血夹止血，避免皮下出血或药液回流，影响下次注射，备用鼠筒是为了提高效率轮换使用的。（如果动物样本大也可多购鼠筒）
四、注意事项：
① 鼠筒为有机玻璃制作，应避免接触酒精和各种有机溶剂，否则易出现龟裂或损坏。
② 动物在被装筒捉持时会有应激反应，粪尿过多，应及时清理上板面和鼠筒内的粪便。
③仪器不用时应及时拔掉电源，避免仪器过热损坏。
仪器不可随意拆卸，如有问题请及时与厂家联系。
