我们都知道，给小鼠注射尾静脉并不容易。难点只有三个：一是动物是否稳定，二是鼠尾血管的充盈程度，三是进针方向。如果这三个变成动物，保定结实，血管很饱满，能看到针尖进入血管，尾注就没有什么困难了。小鼠可视尾静脉注射仪解决了这样的问题：首先，使用鼠标筒，大鼠装载速度快，固定牢固，鼠标位置舒适，不会向前移动，从而确保注射过程中的稳定性；用光照射鼠尾，使鼠尾的血管出现，使针尖在视觉条件下有针对性的插入，不再是单凭手感的盲打，是否进针进入血管，摆动针头，看血管是否移动，就知道针头是否在血管中。它的主要使用方法如下：
小鼠可视尾静脉注射仪使用方法：
一、连接
（1）连接电源：将电源适配器分别连接到电源和仪器上。连接后，主机面板上的绿色指示灯亮。
（2）连接脚踏开关：将脚踏开关插头插入主机箱。
（3）连接鼠尾透视灯：将L型鼠尾支撑板上的灯丝插头插入主机箱相应插座，按下右侧黄色按钮，黄色灯应亮。
二、装鼠
（1）快速鼠药筒的使用：
快速装鼠管一改以往的鼠钻装鼠方式，（鼠钻装鼠方式可以一次使用。动物在不知不觉中很容易进入，但动物更难进入几次后才知道进入的不适。）快速装鼠桶是一种后拉尾式装鼠方式。畚箕式鼠桶前端可将鼠标顺利拉入桶内。为避免鼠标在桶内滚动，桶内安装了腹部限位块，可有效限制鼠标在桶内的身体转动。鼠标拉入枪管后，可用前塞堵住。前塞孔根据老鼠头骨的生理曲线设计，能有效控制老鼠的头部，不影响正常呼吸。同时，它也能为鼠标的前肢找到一个舒适的位置。当动物不能自由活动时，塞子的固定位置应以正常呼吸为准，不影响动物肺部的扩张（可通过透明有机玻璃观察和调整）。
（2）将安装好的鼠筒放在主机上面板的滑槽上。鼠桶要侧放（因为静脉血管在鼠尾的两侧），定位销进入定位孔。鼠尾穿过敞开的挡板，放入鼠尾挤压板下板的凹槽中。按下右侧黄色按钮，黄灯亮，观察鼠尾血管是否放置正确，然后按下黄色按钮关闭黄灯，然后将上挤压板向右转动90°并向下按直到听到清脆的吸音声。这时候，鼠尾已经被压住了。按压时，缓慢施力。为了及时将鼠尾根部的血液挤到鼠尾尖，按下时黄灯会自动亮起。此时黄光亮度旋钮可以根据黄光透血管的情况进行调节，使血管清晰（环境的亮度变化会影响血管的外观。建议操作在黑暗的房间里，避免直射光）。
（3）注射位置的调整：无论老鼠多大，针头都应该从老鼠尾巴的下1/3处注射。这样可以从下往上逐渐弹奏，避免漏针眼。由于动物的品系和体型不同，尾巴的长度也不同，所以注射时需要调整位置。方法是松开左侧金属旋钮，将L型鼠尾托板拉到合适位置并拧紧。
（4）放大镜的使用：放大镜用于更清楚地看到尾静脉血管和针头的进入（如果视力好，也可以取下来不用）。放大镜可以调节角度位置，可以适应不同视角的人。松开放大镜支架上螺丝后可以改变放大镜角度，松开下螺丝可以改变进入角度，加载大鼠时支架旋转中心轴可以暂时离开放大镜.总之，放大镜设计合理，使用方便，不会影响其他操作。
（5）4.5针过大，注射后止血。4.5针过大，应用于止血。目前，在头皮针后连接1毫升注射器也是有用的。这是通过看回血来判断是否进入血管。不管用什么针，重要的一点是同时看血管和针在哪里。这样，注射就很容易了。针头进入血管后，左右摆动针头，看血管是否移动。这是判断是否进入血管的方法。
确认小鼠可视尾静脉注射仪针头进入血管后，踩下脚踏开关，向上转动上挤压板，向左打开90°。此时，可将药物缓慢推入静脉，以免动物出现充血性心力衰竭。每次注射量不得超过0.2ml。注射后，用棉球按压针孔半分钟以上，以免皮下出血或液体倒流，影响下次注射。备用鼠标筒轮流使用，提高效率。
