免疫荧光(IF)是使用显微镜深入了解细胞结构和过程的有效方法，可评估特定蛋白质的表达和位置，使得免疫荧光成为科学家解决许多细胞生物学问题的工具。
免疫荧光实验基于以下主要步骤：
1.特异性抗体与感兴趣的蛋白质结合。
2.荧光染料与这些免疫复合物偶联，以便使用显微镜观察感兴趣的蛋白质。
内皮细胞中vWF的免疫荧光染色。肌动蛋白用phalloidin染色(绿色)，细胞核用DAPI染色(蓝色)。
区分直接和间接免疫荧光。在直接免疫荧光中，一抗直接偶联到荧光团（也称为荧光色素），便于处理和快速可视化。在间接免疫荧光中，使用特异性结合一抗的二级荧光团偶联抗体来可视化感兴趣的结。
尽管di二种方法比直接免疫荧光更耗时，但它有几个显著的优势，比如它通常更便宜，因为二抗可以用于不同的一抗。此外，通过结合多个一抗和特定的二抗(每个抗体都用不同的荧光团标记)，可以在单个样品中平行特异地显示多个蛋白质(多色免疫荧光)。
免疫荧光染色：典型的工作流程
每个免疫荧光染色方案由培养、固定、染色、成像四个主要步骤组成，可细分如下：
免疫荧光染色是一种非常敏感的方法，可能需要排除故障《免疫英冠染色故障排除指南》。方案中的微小变化可能会导致不同的结果，而这些结果不再具有可比性。因此，在您的特定方案中精确地保持相同的条件是非常重要的(例如，细胞密度、抗体稀释度、培养温度和培养时间)。
免疫荧光实验方案对比
传统染色与ibidi方案染色
当使用任何ibidi解决方案时，ibidi的免疫荧光染色方案比传统方案要简便快速的多。无需在松散的盖玻片上生长细胞，细胞可直接在ibidi玻片上生长和染色。
用于免疫荧光应用的各种ibidi产品
