近年来，qPCR检测技术，以及环介导等温扩增（Loop-Mediated Isothermal Amplification，LAMP）技术，作为一种新兴的核酸扩增方法，在支原体临床检测中显示出了巨大的潜力。
LAMP技术作为一种等温扩增技术，与传统的PCR方法相比，不需要复杂的温度循环，只需要稳定的恒温环境即可实现核酸扩增。这使得LAMP技术在临床实验室和野外条件下都具备广泛应用的可能性。LAMP技术（环介导等温扩增）在支原体检测中具有一些优点和缺点，下面分别进行详细介绍：
优点：
快速扩增： LAMP技术采用等温条件，不需要复杂的温度循环，因此扩增速度较快，通常可以在30分钟到1小时内完成，比传统PCR更迅速。
高特异性： LAMP技术在引物设计上采用多个特异性引物，结合复杂的扩增动力学，提供了较高的特异性，能够准确地区分目标支原体序列。
设备简单： LAMP反应只需要一个稳定的恒温环境，例如恒温水浴或热拟温器，不需要复杂的温度控制设备，降低了实验的技术和设备门槛。
结果可视化： LAMP扩增产物通常形成可肉眼观察的浑浊沉淀物，有助于直接观察扩增结果。此外，可以通过添加荧光染料或指示剂，实现产物的荧光可视化，进一步提高结果分析的便捷性。
适用于野外应用： LAMP技术在野外环境中也能够实施，因为它只需要一个恒温环境，适用于一些需要快速诊断的场景，如偏远地区或灾害现场。
缺点：
复杂的引物设计： LAMP技术需要设计多个引物，包括外部引物、内部引物和环引物，引物设计较为复杂，需要耗费一定的时间和资源。
产物结构复杂： LAMP扩增产物呈现出高度分支的簇环结构，这种结构可能对产物的纯化和后续分析造成一些挑战。
不适用于大片段扩增： LAMP技术相对适用于短片段的核酸扩增，不太适用于较长片段的扩增，这一点与传统PCR方法不同。
定量困难： LAMP技术的产物数量与起始模板数量之间的线性关系可能较差，因此在定量方面存在一定的局限性。
部分产物难以区分： LAMP反应产物包括多个簇环结构，其中有些结构可能与非特异性产物难以区分，可能对结果解释带来困扰。
综上所述，LAMP技术在支原体检测中具有快速、高特异性、设备要求简单等优点，但也存在引物设计复杂、产物结构复杂以及部分定量困难等缺点。选择是否采用LAMP技术还需综合考虑具体实验需求和条件，以及在实际应用中的可行性。
因此，综合考虑，qPCR技术在支原体检测的生物医药领域的工业检测中，目前还是难以被取代的。
