原代细胞分离培养是一项实验技术,它涉及从生物体中提取组织或细胞,并将它们转移到体外环境中进行培养。这些来源包括各种组织器官、外周血和胚胎等。在培养过程中,原代细胞的生长速度相对较慢,通常在培养的前10代内停止生长。因此,通常将培养的细胞归类为原代细胞培养,这些细胞包括第1到第10代的细胞。下面让我们一起来看看原代细胞分离的注意事项与常见问题吧!
一、常见问题:
1. 保存血清好的方法是什么?
建议将血清存放在 -5℃ 至 -20℃的温度范围内。如果存放在4℃,请不要超过一个月。如果无法一次使用完整瓶血清,建议将血清经过无菌分装后存放在适当的灭菌容器中,然后再放回冷冻。
2. 如何解冻血清以保持其最佳培养状态?
建议将血清从冷冻箱中取出后,首先放置在2~8℃的冰箱中使其融化,然后在室温下使其融化。但务必要注意,在融解过程中必须规律地摇晃以确保均匀。
3. 血清解冻后发现有絮状沉淀物出现,应该如何处理?
血清中出现沉淀物有很多原因,但最常见的是由于血清中脂蛋白的变性所致。此外,血清解冻后血纤维蛋白的存在也可能导致沉淀物的生成。
1. 通过使C57BL/6小鼠颈椎脱臼死亡,然后用适量的酒精喷洒和Buffer滴加的方式,快速分离结肠。
2. 沿着肠系膜进行剪开,利用DMEM培养基清洗结肠,以去除其中的肠腔内容物。
3. 使用无菌剪刀将结肠组织剪成约1mm³大小的碎片。
4. 使用10 mL 0.1%胶原酶I和3%分散酶II对组织进行消化,在37℃的摇床上消化25分钟。
5. 进行吹打混匀,并通过100μm细胞过滤器过滤,以收集上清液。
6. 采用相差消化法和差速贴壁法去除成纤维细胞。
7. 加入1 mL培养基,将细胞悬浮后接种于含有培养基的培养瓶中,在37℃、5% CO2的细胞培养箱中培养。
8. 当细胞生长至培养瓶的80-90%时,使用5 g/L胰酶消化液进行消化,然后将其接种于细胞培养板中。
二、注意事项:
原代细胞培养具有较高的成本,并对培养条件有严格要求。因此,在培养过程中需要特别注意保持无菌环境,并尽可能去除目标细胞以外的其他细胞。
1. 在实验开始前,必须对所有器械进行消毒处理,并进行高压灭菌,液体则需要进行无菌过滤处理。
2. 酶消化液必须立即现用现配,以确保其活性。
3. 在实验过程中,需要充分消化组织以确保检测到足够数量的细胞。
4. 同时,也要尽可能充分去除成纤维细胞。
5. 在后续的培养过程中,必须保持全程无菌操作,以确保培养环境的纯净性。
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