材料准备：
准备好凝胶材料（琼脂糖或聚丙烯酰胺）。
准备电泳缓冲液（如TBE或TAE）。
准备待分析的样品（DNA、RNA或蛋白质）。
溶解凝胶材料：
根据需要称取适量的琼脂糖或聚丙烯酰胺。
将其加入缓冲液中，加热至溶解。
倒入模具：
将溶解后的凝胶倒入电泳模具，插入梳子以形成样品孔，待凝胶固化。
去除梳子：
凝胶固化后小心取出梳子，形成样品孔。
放置凝胶：
将凝胶放入电泳槽中，确保其与缓冲液接触。
加入缓冲液：
在凝胶上方和槽内加入适量的电泳缓冲液，确保样品孔被覆盖。
准备样品：
将样品与上样缓冲液混合，准备加样。
加样：
使用移液器将样品小心地加入到样品孔中，避免样品混入相邻孔。
连接电源：
确保电源与电泳仪连接正确。
设置电压：
根据实验需求设置适合的电压（一般为80-150 V）。
启动电泳：
打开电源，观察电泳过程中的样品迁移情况。
监测样品的迁移，适时记录电泳时间。
电泳结束后，关闭电源，小心取出凝胶。
染色：
根据需要使用染色液（如EB或SYBR）染色样品。
成像：
使用成像设备记录电泳结果。
安全性：
确保电源线无损坏，避免接触水分，操作时注意电气安全。
样品量：
加样时避免过量，以免影响分离效果。
缓冲液：
确保缓冲液配比正确，以保证分离效果的可靠性。
电泳时间与电压：
根据样品类型和凝胶厚度选择合适的电泳时间和电压，避免过度电泳导致样品扩散。
观察进度：
在电泳过程中，适时观察样品的迁移情况，确保实验进展符合预期。
凝胶处理：
在取出凝胶时小心，避免损坏凝胶结构。
遵循以上使用方法和注意事项，可以有效提高电泳实验的成功率和结果的可靠性。
