伯乐电泳槽（如 1658001 和 1658003）是一种广泛用于核酸（DNA、RNA）和蛋白质分离的实验设备。以下将详细介绍伯乐电泳槽的使用方法，从设备准备到实验完成的每个步骤都涵盖其中，以帮助实验人员高效、安全地操作该设备。
确保电泳槽的所有组件（凝胶托架、电极组件、缓冲液槽等）完整无损。
检查电极线连接无破损，确保实验安全。
确保实验环境干燥，避免设备短路。
根据实验目标选择适合的缓冲液：
核酸实验：使用 TAE（Tris-Acetate-EDTA）或 TBE（Tris-Borate-EDTA）缓冲液。
蛋白质实验：使用 SDS-Tris-Glycine 缓冲液。
准备琼脂糖溶液：
根据目标片段大小，选择适合的浓度（通常 0.8%-2%）。
例如：分离大片段 DNA（>1000 bp）用 0.8%-1% 的琼脂糖；分离小片段 DNA（<500 bp）用 1.5%-2%。
称取适量琼脂糖粉末，加入缓冲液（如 TAE 或 TBE），搅拌均匀。
加热溶解：
在微波炉中加热琼脂糖混合液，直至溶解（无颗粒）。
冷却至约 50℃。
倒入凝胶托架：
将凝胶溶液倒入凝胶托架中，插入梳子（形成样品槽），静置约 20-30 分钟直至凝胶固化。
选择合适的预制胶或自制胶：
使用伯乐的 Ready Gel（货号：1610150）预制胶，节省时间。
若自制，按照目标分离分子量配置分离胶和浓缩胶，浇注至 Mini-PROTEAN 电泳槽内。
安装凝胶：
将固化后的聚丙烯酰胺凝胶固定在伯乐电泳槽的凝胶夹上。
核酸样品：
使用 DNA 上样缓冲液（如 6X Loading Dye）与样品混合。
缓冲液通常含有甘油或溴酚蓝，可提高样品密度并便于追踪迁移进程。
蛋白质样品：
使用 SDS 上样缓冲液，将蛋白样品变性处理（通常需 95℃ 水浴加热 5 分钟）。
加入染料（如溴酚蓝）以便于电泳过程中观察。
用加样枪将样品缓慢注入凝胶样品槽，避免气泡进入。
在最后一个样品槽中加入分子量标准 Marker（DNA Ladder 或蛋白质 Marker），以对比目标片段大小。
将凝胶托架安装到电泳槽中，确保凝胶正确放置。
加入缓冲液至液面，确保缓冲液覆盖凝胶并接触电极。
将电泳槽连接到伯乐 PowerPac 电源（如 1645050）。
确保电极线红色接正极，黑色接负极。
核酸实验：
设置电压为 50-150 V，运行时间 30-90 分钟。
根据 DNA 片段大小调整运行时间，染料需运行至凝胶 2/3 处。
蛋白质实验：
设置电压为 100-200 V，运行时间 30-60 分钟。
实验过程中，观察溴酚蓝或其他染料的迁移情况。
定期检查缓冲液液位，确保电泳过程中不会干涸。
关闭电源，断开电极线。
小心取出凝胶托架。
将琼脂糖凝胶浸入染色液中（如 Ethidium Bromide（EB） 或 SYBR Green）。
EB 染色：浸泡 15-30 分钟后脱色。
SYBR Green：快速染色，灵敏度更高。
使用脱色液（如去离子水）清洗凝胶，去除背景染色。
将聚丙烯酰胺凝胶浸入染色液（如 考马斯亮蓝 或 银染液）。
根据染色液说明，完成染色和脱色步骤。
使用伯乐的成像系统（如 Gel Doc EZ System，货号：1708195）观察凝胶条带。
分析条带的分子量和样品浓度，记录实验结果。
倒掉缓冲液，用去离子水清洗缓冲液槽。
拆卸电极组件，用湿布擦拭干净。
检查电极线和电泳槽是否有损坏或老化。
如发现异常，及时更换或联系供应商维修。
将设备存放在干燥、无尘的环境中，避免电极组件长期接触水分。
原因：电场不均或缓冲液液位不足。
解决：检查缓冲液覆盖是否完，确保电泳槽水平放置。
原因：运行时间过长或缓冲液温度过高。
解决：缩短运行时间或更换冷却缓冲液。
原因：电极线连接错误或电压设置不当。
解决：检查电极连接，确保正负极接线无误。
伯乐电泳槽操作简单、高效，但需要严格遵守实验规范，确保实验结果准确无误。以上使用方法适用于伯乐的各种电泳槽设备（如 1658001 和 1658003），如果在使用过程中遇到特殊问题，建议参考产品手册或联系技术支持团队。通过规范操作，您将轻松实现核酸或蛋白质的精准分离与分析！
