| 缓冲液 | 使用液 | 浓贮存液（每升） |
| Tris-乙酸（TAE） | 1×：0.04mol/L Tris-乙酸 | 50×：242g Tris碱 |
|
| 0.001mol/L EDTA | 57.1ml冰乙酸 |
|
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| 100ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-磷酸（TPE） | 1×:0.09mol/L Tris-磷酸 | 10×:10g Tris碱 |
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| 0.002mol/L EDTA | 15.5ml85%磷酸（1.679g/ml） |
|
|
| 40ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-硼酸（TBE）a | 0.5×0.045mol/L Tris-硼酸 | 5×：54g Tris碱 |
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| 0.001mol/L EDTA | 27.5硼酸 |
|
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| 20ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| 碱性缓冲液b | 1×:50mmol/L NaOH | 1×:5ml 10mol/L NaOH |
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| 1mmol/L EDTA | 2ml 0.5mmol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-甘氨酸c | 1×:25mmol/L Tris | 5×:15.1g Tris |
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| 250mmol/L 甘氨酸 | 94g 苷氨酸（电泳级）（pH8.3） |
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| 0.1% SDS | 50ml 10% SDS（电泳级） |
| 缓冲液 | 使用液 | 浓贮存液（每升） |
| Tris-乙酸（TAE） | 1×：0.04mol/L Tris-乙酸 | 50×：242g Tris碱 |
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| 0.001mol/L EDTA | 57.1ml冰乙酸 |
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| 100ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-磷酸（TPE） | 1×:0.09mol/L Tris-磷酸 | 10×:10g Tris碱 |
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| 0.002mol/L EDTA | 15.5ml85%磷酸（1.679g/ml） |
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| 40ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-硼酸（TBE）a | 0.5×0.045mol/L Tris-硼酸 | 5×：54g Tris碱 |
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| 0.001mol/L EDTA | 27.5硼酸 |
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| 20ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| 碱性缓冲液b | 1×:50mmol/L NaOH | 1×:5ml 10mol/L NaOH |
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| 1mmol/L EDTA | 2ml 0.5mmol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-甘氨酸c | 1×:25mmol/L Tris | 5×:15.1g Tris |
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| 250mmol/L 甘氨酸 | 94g 苷氨酸（电泳级）（pH8.3） |
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| 0.1% SDS | 50ml 10% SDS（电泳级） |
| 缓冲液 | 使用液 | 浓贮存液（每升） |
| Tris-乙酸（TAE） | 1×：0.04mol/L Tris-乙酸 | 50×：242g Tris碱 |
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| 0.001mol/L EDTA | 57.1ml冰乙酸 |
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| 100ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-磷酸（TPE） | 1×:0.09mol/L Tris-磷酸 | 10×:10g Tris碱 |
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| 0.002mol/L EDTA | 15.5ml85%磷酸（1.679g/ml） |
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| 40ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-硼酸（TBE）a | 0.5×0.045mol/L Tris-硼酸 | 5×：54g Tris碱 |
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| 0.001mol/L EDTA | 27.5硼酸 |
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| 20ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0） |
| 碱性缓冲液b | 1×:50mmol/L NaOH | 1×:5ml 10mol/L NaOH |
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| 1mmol/L EDTA | 2ml 0.5mmol/L EDTA（pH8.0） |
| Tris-甘氨酸c | 1×:25mmol/L Tris | 5×:15.1g Tris |
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| 250mmol/L 甘氨酸 | 94g 苷氨酸（电泳级）（pH8.3） |
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| 0.1% SDS | 50ml 10% SDS（电泳级） |
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。
安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。
处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死亡，通过对呼吸、心跳、瞳孔、神经反射等指征的观察，对死亡作出综合判断；再者要注意环保，避免污染环境，还要妥善处理好尸体。
一、颈椎脱臼处死法
此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠zui常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。
二、断头处死法
此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时，实验人员用左手按住实验动物的背部，拇指夹住实验动物右腋窝，食指和中指夹住左前肢，右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断，使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。
三、击打头盖骨处死法
主要用于豚鼠和兔的处死。操作时抓住实验动物尾部并提起，用木锤等硬物猛烈打击实验动物头部，使大脑中枢遭到破坏，实验动物痉挛并死亡。
四、放血处死法
此法适用于各种实验动物。具体做法是将实验动物的股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血，导致急性大出血、休克、死亡。
犬、猴等大动物应在轻度麻醉状态下，在股三角做横切口，将股动脉、股静脉全部暴露并切断，让血液流出。操作时用自来水不断冲洗切口及血液，既可保持血液畅流无阻，又可保持操作台清洁，使实验动物急性大出血死亡。
五、空气栓塞处死法
处死兔、猫、犬常用此法。向实验动物静脉内注入一定量的空气，形成肺动脉或冠状动脉空气栓塞，或导致心腔内充满气泡，心脏收缩时气泡变小，心脏舒张时气泡变大，从而影响回心血液量和心输出量，引起循环障碍、休克、死亡。空气栓塞处死法注入的空气量，猫和兔为20～50ml，犬为90～160ml。
六、过量麻醉处死法
此法多用于处死豚鼠和家兔。快速过量注射非挥发性麻醉药（投药量为深麻醉时的30倍），或让动物吸入过量的乙醚，使实验动物中枢神经经过过度抑制，导致死亡。
七、毒气处死法
让实验动物吸入大量CO2等气体而中毒死亡。
