1. 柱平衡步骤：向吸附柱CP4 中（吸附柱放入收集管中）加入500 µL的平衡液BL, 12000 rpm（~13400g）离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。（请使用当天处理过的柱子） 2. 取5-15ml 过夜培养的菌液加入离心管中，12000 rpm （~13400g ）离心1 min，尽量吸除上清。
注意：菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中，菌体量以能够充分裂解为佳，过多的菌体裂解不充分会降低质粒的提取效率。
3. 向留有菌体沉淀的离心管中加入500 µL溶液Pl （请先检查是否已加入RNaseA ） ，使用移液器或涡旋振荡器*悬浮细菌细胞沉淀。
注意：请务必*悬浮细菌沉淀，如果有未*混匀的菌块会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。质粒
4. 向离心管中加入500µL溶液P2 ，温和地上下翻转6-8 次使菌体充分裂解。
注意：温和地混合不要剧烈震荡，以免污染基因组DNA 。此时菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5 min，以免质粒受到破坏。如果未变得清亮，可能由于菌体过多，裂解不*，应减少菌体量。
5. 向离心管中加入700 µL溶液P3 ，立即温和地上下翻转6-8 次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。12000rpm （ ~13400g ）离心10 min，此时在离心管底部形成沉淀。 注意：P3 加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。
6. 将上一步收集的上清液分次加入过滤柱Cs （过滤柱放入收集管中）, 12000rpm（~13400g ）离心2 min，小心地将离心后收集管中得到的溶液分次加入吸附柱CP4 中（吸附柱放入收集管中）, （如果过滤柱中有残余的液体说明步骤5 吸取的上清中杂质过多，可以延长离心的时间；如果离心后收集管底部有少量的沉淀．尽量地吸取上清）。
7. 12000rpm （~13400g）离心l min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP4 放入收集管中。
8. 向吸附柱CP4 中加入500µL去蛋白液PD，12000rpm（~13400g）离心l min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP4 放入收集管中。
9. 向吸附柱CP4 中加入600µL漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm（~13400g）离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP4 放入收集管中。注意：加入漂洗液PW后，如果室温静置2-5 min，有助于更好地去除杂质。
10. 向吸附柱CP4 中加入600μL漂洗液PW , 12000rpm（13400g）离心l min，倒掉收集管中的废液。
11. 将吸附柱CP4 重新放回收集管中置于12000rpm（~13400g ）离心2 min，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP4 开盖，置于室温放置数min，以*晾干吸附材料中残余的漂洗液。
12. 将吸附柱自科置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加100-300µL洗脱缓冲液TB ，室温放置2 min，12000rpm（~13400g ）离心l min将质粒溶液收集到离心管中。
注意：为了增加质粒的回收效率，可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中．重复步骤12 。洗脱液的pH 值对于洗脱效率有很大影响。若用水做洗脱液，应保证其pH 值在7.0-8.5 范围内（可以用NaOH 将水的pH 值调到此范围）, pH 值低于7.0 会降低洗脱效率。洗脱缓冲液体积不应少于100µL，体积过小影响回收效率。且DNA产物应保存在-20 ℃ ，以防DNA 降解。
质粒DNA 浓度及纯度检测:
得到的质粒DNA 可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。电泳可能为单一条带，也可能为2到3条DNA 条带，这主要与提取物培养时间长短、提取时操作剧烈程度等有关。 OD260值为 l 相当于大约 50µg/ml 双链 DNA 。 OD260 / 0D28 。比值应为 1.7 -1.9 ，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，但并不表示纯度低，因为 pH 值和离子存在会影响光吸收值。
