北京艾泽信科技有限公司
2013/9/14 22:02:49MC3T3细胞相关操作:
培养条件:
每两天换液一次
无菌恒温培养箱
37℃
5% CO2
PH值7.2~7.4
*培养基成分: 不含酚红 α-MEM、10% FBS, 0.1 mg/mL L-谷氨酸盐, and 1% 双抗(100 U ml−1 青霉素 and 100 μg ml−1 链霉素),( 20 mM HEPES?)
诱导成骨细胞分化:上述+50 μg/mL 抗坏血酸and 10 (5?)mM β-磷酸甘油
细胞复苏
1.37°C水浴预热培养基(αMEM+10% FBS);
2.从液氮中取出细胞迅速放入37°C水浴快速解冻(解冻后不要继续暖细胞);
3.在超净台中加入5ml培养基重悬细胞,1000rpm离心5min;
4.弃上清,加入5ml培养基重悬细胞后转入T25培养瓶中,轻轻晃匀;
5.置于37°C,5% CO2培养箱中培养(培养瓶盖没有透气孔的话,瓶盖不要拧太紧);
6.第二天,用新鲜的培养基给细胞换液后继续培养。
细胞传代
1.当细胞融合度达到90%以上时,给细胞传代;
2.37°C水浴预热培养基(αMEM+10% FBS);
3.在超净台中,弃培养基,加入2-5mlPBS清洗细胞后,再加入1ml胰酶消化细胞;
4.显微镜下观察到细胞变圆,有细胞开始脱离瓶壁时,加入5ml培养基(αMEM+10% FBS)终止消化;
5.用移液器轻轻吹下瓶壁上剩余的细胞,并轻轻吹打将细胞吹散;
6.将细胞移入离心管中,1000rpm离心5min;
7.弃上清,加入15-20ml的培养基(含血清)重悬细胞后转入T75培养瓶中或按适当比例传到T25瓶中(确保细胞贴壁后融合度在25-50%之间),细胞密度在1×104 cells/cm2 (2.5×105 cells/T-25瓶),混匀细胞悬液,确保细胞均匀分布;
8.将培养瓶置于37°C,5% CO2的无菌培养箱中培养。
骨髓间充质干细胞培养方法:
培养基:D-MEM(低糖)(450 mL)、10%FBS(50ml)、10mg/mL庆大霉素(250ul)、0.1 mg/mL L-谷氨酸盐
无菌恒温培养箱
37℃
5% CO2
1、接种细胞后,每48h更换一次培养基。每周传代两次,传代时机选在分裂率为1:3或1:4时进行。通常试验选用3-8传代细胞。
2、细胞鉴定:
①第四传代,去除培养基,加入3 ml of 0.25% (重量/体积) 胰蛋白酶/0.02% (重量/体积) EDTA,室温下消化3min。冲洗细胞,加入1 ml冷PBS(4—8℃),4℃下300g离心8min,离心两次。每个离心管中用100ul冷PBS悬浮1×106个细胞,使用抗鼠FITC标记Sca-1, CD11b and CD45抗体染色,或者是PE标记 CD29, CD31, CD34, CD44, CD86, CD105, Ia抗体染色,留一管用作对照。
②细胞在暗环境下于4℃环境中染色30min
③冲洗细胞,加入1 ml冷PBS(4—8℃),4℃下300g离心8min,离心两次。
④为了评估细胞生活状况,在300ul冷PBS中加入PI(0.6 µg 每百万细胞),加入细胞中,室温暗环境下孵育15min。
⑤采用流式细胞仪分析细胞。使用FL1、FL2发射通道。每个样本收集201,000个事件。
3、成骨细胞分化:
①第四传代,去除培养基,加入3 ml of 0.25% (重量/体积) 胰蛋白酶/0.02% (重量/体积) EDTA,室温下消化3min。
②24孔每孔接种1 × 104 个细胞。培养基为α-MEM,10% (体积分数) FBS, 10 − 7 M 地塞米松, 10 mM β-甘油磷酸钠 and 50 µM 2-磷酸抗坏血酸盐,每孔培养基500ul。
③每周更换两次培养基,培养2-4周,该期间细胞不传代
④14天后,使用Alkaline Phosphatase Kit在6孔板上测定ALP活性。
⑤再培养14d。
⑥von Kossa染色评估矿化情况,每孔将培养基替换为多聚甲醛,处理30min
⑦每孔用3ml蒸馏水冲洗3min,共冲洗3遍
⑧每孔以300 µl,5%(wt/vol)硝酸银溶液染色,在光下孵育30min
⑨每孔用3ml蒸馏水冲洗3min,共冲洗3遍
10吸净水,每孔加入300 µl,5% (wt/vol)硫代硫酸钠溶液,处理5min
11每孔用3ml蒸馏水冲洗3min,共冲洗3
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