山羊痘病毒(GTPV)核酸检测试剂盒(荧光-PCR法）
【产品名称】
通用名称：山羊痘病毒(GTPV)核酸检测试剂盒（荧光-PCR法）
【包装规格】50T/盒
【预期用途】
本试剂盒适用于检测羊皮肤和呼吸道等样本中的山羊痘病毒，适用于山羊痘病毒病感染的辅助诊断，其检测结果仅供参考。
【检验原理】
本试剂盒采用TaqMan探针法实时荧光PCR技术，设计一对山羊痘病毒特异性引物，各结合一条特异性探针，用荧光PCR技术对山羊痘病毒的核酸进行体外扩增检测，用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
【试剂组成】
名 称 | 规 格 |
GTPV酶液 | 25μL×1管 |
GTPV反应液 | 975uL×1管 |
GTPV阳性质控品 | 50μL ×1管 |
阴性质控品 | 50μL ×1管 |
说明：不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
【储存条件及有效期】
-20℃±5℃，避光保存、运输、反复冻融少于7次，有效期12个月。
【适用仪器】
ABI 、安捷伦MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列荧光定量PCR检测仪。
【标本采集】
采集疑似患病羊的皮肤组织样本或呼吸道样本。
【保存和运输】
上述标本短期内可保存于-20℃，长期保存可置-70℃，但不能超过6个月，标本运送应采用2~8℃冰袋运输，严禁反复冻融。
【使用方法】
1. 样品处理（样本处理区）
1.1 样本前处理
组织样品：每份组织分别从3个不同的位置称取样品约1g，手术剪剪碎混匀后取0.5g于研磨器中研磨，加入1.5mL生理盐水后继续研磨，待匀浆后转至1.5mL灭菌离心管中，8000rpm离心2min，取上清液100μL于1.5mL灭菌离心管中；分泌液样品直接取100μL于1.5mL灭菌离心管中。
1.2 DNA提取
为了使实验结果稳定、有效、可靠，我们建议使用商品化的病毒DNA 提取试剂盒进行提取，严格按照对应试剂盒说明书进行操作。
2. 试剂配制（试剂准备区）
根据待检测样本总数，设所需要的PCR反应管管数为N(N=样本数+1管阴性对照+1管阳性对照；样品每满7份，多配制1份)，每测试反应体系配制如下表：
试剂 | GTPV反应液 | 酶液 |
用量（样本数为N） | 19.5μL | 0.5μL |
3. 加样（样本处理区）
将步骤1提取的DNA、阳性质控品、阴性质控品各取5μL，分别加入相应的反应管中，盖好管盖，混匀，短暂离心。
4. PCR扩增（核酸扩增区）
4.1 将待检测反应管置于荧光定量PCR仪反应槽内；
4.2 设置好通道、样品信息，反应体系设置为25μL；
荧光通道选择：检测通道（Reporter Dye）FAM，淬灭通道（Quencher Dye）NONE，请勿选择ROX参比荧光
4.3 推荐循环参数设置：
步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 3min | 否 |
2 | 40 cycles | 95℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
5. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定
设置Baseline和Threshold：一般直接按机器自动分析的结果分析，当曲线出现整体倾斜时，根据分析后图像调节Baseline的start值(一般可在3~15范围内调节)、stop值(一般可在5~20范围内调节)，以及Threshold的Value值(上下拖动阈值线至高于阴性对照)，重新分析结果。
5.2 结果判断
阳性：检测通道Ct值≤35.0，且曲线有明显的指数增长曲线。
可疑：检测通道35<Ct值<38.0，且出现典型扩增曲线的样本建议重复试验，重复试验结果出现Ct值≤38.0和典型扩增曲线者判为阳性，否则为阴性。
阴性：样本检测结果无Ct值且无明显的扩增曲线。
6. 检测方法的局限性
Ø 样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关；
Ø 样本提取过程中没有控制好交叉污染，会出现假阳性结果；
Ø 阳性对照、扩增产物泄漏，会导致假阳性结果；
Ø 病原体在流行过程中基因突变、重组，会导致假阴性结果；
Ø 不同的提取方法存在提取效率差异，会导致假阴性结果；
Ø 试剂运输，保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降，出现假阴性或定量检测不准确的结果；
Ø 本检测结果仅供参考，如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
7. 质控标准
阴性质控品：无明显扩增曲线且无Ct值显示；
阳性质控品：扩增曲线有明显指数生长期，且Ct值≤30；
以上条件应同时满足，否则实验视为无效。
8. 性能指标
（1）敏感性：内控样本敏感性为100%，综合评价敏感性98%以上。最低检测限不低于1000copies/ml。
（2）特异性：100%。
（3）稳定性：批内及批间差异≤3%。
【注意事项】
Ø 所有操作严格按照说明书进行；
Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化，完全混匀并短暂离心；
Ø 反应液应避光保存；
Ø 反应中尽量避免气泡存在，管盖需盖紧；
Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服；
Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行，以免交叉污染；
Ø 实验完毕后用10%次氯酸或75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器；
Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待，并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。
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