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AquaPen AquaPen手持式藻类荧光测量仪(2018.4)

型号
AquaPen
参数
产地类别:进口
北京易科泰生态技术有限公司

高级会员15年 

代理商

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土壤与植物生理生态研究监测、环境气象监测、水文水质及地下水监测、水土保持研究监测、荒漠化监测、精准农业以及动物生态研究等仪器技术的引进推广和系统集成,并为生态环境实验研究和规划设计提供技术方案和分析测量。

   北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年,为中关村高新技术企业,致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务,特别是在光谱成像技术(高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等)、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面,与专业企业PSI、Specim、Sable等合作,致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成,为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80%以上具备硕士或硕士以上学位,并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。


   公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech®实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心(与陕西师范大学合作建立)、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro 光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备,可以进行实验研究分析、实验培训等,欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。


   易科泰公司与欧洲PSI公司(叶绿素荧光技术与表型分析技术)、美国SABLE公司(动物能量代谢技术)、欧洲SPECIM公司(高光谱成像技术)、欧洲WORKSWELL公司(红外热成像技术)、欧洲ATOMTRACE公司(LIBS元素分析技术)、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司(样芯密度扫描与元素分析)、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系,在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验,成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone®无人机遥感平台、SoilTron®多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox®土壤呼吸测量技术、PhenoPlot®轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2/O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等,在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络(生态系统监测网络)等项目中发挥重要作用。


   “工欲善其事,必先利其器”,易科泰公司将秉承“利其器,善其事”的经营理念,为国内生态-农业-健康研究与发展提供优秀的技术方案和服务。


欢迎关注北京易科泰微信公众号







详细信息

AquaPen手持式藻类荧光测量仪

    AquaPen AP110手持式藻类荧光测量仪是一款用于快速、精确测量水体藻类与蓝藻叶绿素荧光参数的手持式荧光仪。AquaPen有两种探头型号。AP110-C配备比色杯试管测量室,将要测量的水体、悬浊液或培养溶液采集到比色杯中进行测量,配备455nm蓝色和620nmLED红色光源,既可以测量叶绿素荧光,又可以测量680nm720nm光密度。AP110-P配备了浸入式光学探头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量,也可测量大型藻类。

 

AquaPen 具备*的敏感度,可检测zui低0.5μg Chl/L的叶绿素荧光,可以检测浮游植物浓度极低的自然水体,可用于野外和实验室测量。

AquaPen采用调试式荧光测量技术,可设置多种参数,方便测量多种植物叶绿素荧光。外观小巧,方便携带,设计新颖,操作简单,经济耐用,精度高稳定性好。

应用领域

·         藻类、蓝藻光合特性研究

·         水体藻类含量检测

·         光合突变体筛选与表型研究

·         生物和非生物胁迫的检测

·         藻类抗胁迫能力或者易感性研究

·         经济藻类育种、病害检测、长势与产量评估

  • 教学

功能特点:

  • 结构紧凑、便携性强,LED光源、检测器、控制单元集成于仅手机大小的仪器内,重量仅180g
  • 功能强大,是叶绿素荧光技术的结晶产品,具备了大型荧光仪的所有功能,可以测量所有叶绿素荧光参数
  • 内置了所有通用叶绿素荧光分析实验程序,包括两套荧光淬灭分析程序、3套光响应曲线程序、OJIP–test
  • 高时间分辨率,可达10万次每秒,自动绘出OJIP曲线并给出26OJIP–test参数
  • AquaPen两种探头型号:比色杯试管测量室,既可以测量叶绿素荧光,又可以测量680nm720nm光密度;浸入式光学探头,可直接插到要测量的水体、悬浊液或培养溶液中进行测量,也可测量大型藻类
  • FluorPen专业软件功能强大,可下载、展示叶绿素荧光参数图表,也可以通过软件直接控制仪器进行测量
  • 具备无人值守自动监测功能
  • 内置蓝牙与USB双通讯模块, GPS模块,输出带时间戳和地理位置的叶绿素荧光参数图表
  • 配备多种叶夹型号:固定叶夹式(适用于大批量样品快速测量)、分离叶夹式(适用于暗适应测量)、开放叶夹式(适用于温室、培养箱进行监测)、用户定制式等
  • 可选配野外自动监测式荧光仪,防水防尘设计

测量程序与功能

·         Ft:瞬时叶绿素荧光,暗适应完成后FtF0

·         QY:量子产额,表示光系统II 的效率,等于Fv/Fm(暗适应状态)ΦPSII (光适应状态)

·         OJIP:快速荧光动力学曲线,用于研究植物暗适应后的快速荧光动态变化

·         NPQ:荧光淬灭动力学曲线,用于研究植物从暗适应到光适应状态的荧光淬灭变化过程。

·         LC:光响应曲线,用于研究植物对不同光强的荧光淬灭反应。

·         OD:光密度,反映藻类密度(限AP110-C

技术参数

  • 测量参数包括F0FtFmFm’QYQY_LnQY_DnNPQQpRfdAreaMoSmPIABS/RC50多个叶绿素荧光参数,OD680OD720(限AP110-C3种给光程序的光响应曲线、2种荧光淬灭曲线、OJIP曲线等
  • OJIP–test时间分辨率为10µs(每秒10万次),给出OJIP曲线和26个参数,包括F0FjFiFmFvVjViFm/F0Fv/F0Fv/FmMoAreaFix AreaSmSsNPhi_PoPsi_oPhi_EoPhi–DoPhi_PavPI_AbsABS/RCTRo/RCETo/RCDIo/RC
  • 测量程序:FtQYOJIPNPQ1NPQ2LC1LC2LC3OD(限AP110-C)、Multi无人值守自动监测
  • 测量光:每测量脉冲0-0.09µmol(photons)/m².s0-100%可调
  • 光化学光:01000µmol(photons)/m².s0-100%可调
  • 饱和光:03000µmol(photons)/m².s0-100%可调
  • 探头型号:AP110-C试管式、AP110-P探头式

  • 光源:AP110-C620nm红光和455nm蓝光测量叶绿素荧光,680nm720nm红外光测量ODAP110-P455nm蓝光
  • 试管容积(限AP110-C):4ml
  • 叶绿素荧光检测限:0.5μg Chl/L
  • 检测器:PIN光电二极管,667–750nm滤波器
  • 尺寸大小:超便携,手机大小,165×65×55mm,重量仅290g
  • 存贮:容量16Mb,可存储149000数据点
  • 显示与操作:图形化显示,双键操作,待机8分钟自动关闭
  • 供电:可充电锂电池,USB充电,连续工作48小时,低电报警
  • 工作条件:055095%相对湿度(无凝结水)
  • 存贮条件:-1060095%相对湿度(无凝结水)
  • 通讯方式:蓝牙+USB双通讯模式
  • GPS模块:内置
  • 软件:FluorPen1.1软件,用于数据下载、分析和图表显示,输出Excel数据文件及荧光动力学曲线图,适用于Windows 7及更高操作系统

操作软件与实验结果

   

产地: 欧洲

参考文献

  1. X Chen, et al. 2018. The secretion of organics by living Microcystis under the dark/anoxic condition and its enhancing effect on nitrate removal. Chemosphere 196: 280-287
  2. C M'Rabet, et al. 2018. Impact of two plastic-derived chemicals, the Bisphenol A and the di-2-ethylhexyl phthalate, exposure on the marine toxic dinoflagellate Alexandrium pacificum. Marine Pollution Bulletin 126: 241-249
  3. P Steinrücken, et al. 2018. Comparing EPA production and fatty acid profiles of three Phaeodactylum tricornutum strains under western Norwegian climate conditions. Algal Research 30: 11-22
  4. T Kieselbach, et al. 2018. Proteomic analysis of the phycobiliprotein antenna of the cryptophyte alga Guillardia theta cultured under different light intensities. Photosynthesis Research 135(1-3): 149-163
  5. E Bermejo, et al. 2018. Production of lutein, and polyunsaturated fatty acids by the acidophilic eukaryotic microalga Coccomyxa onubensis under abiotic stress by salt or ultraviolet light. Journal of Bioscience and Bioengineering, Available online 20 January 2018, In Press
  6. W Noh, et al. 2018. Harvesting and contamination control of microalgae Chlorella ellipsoidea using the bio-polymeric flocculant α-poly-l-lysine. Bioresource Technology 249: 206-211
  7. S Arisaka, et al. 2018. Genetic manipulation to overexpress rpaA altered photosynthetic electron transport in Synechocystis sp. PCC 6803. Journal of Bioscience and Bioengineering, Available online 5 March 2018, In Press
  8. J Tang, et al. 2018. Sustainable pollutant removal by periphytic biofilm via microbial composition shifts induced by uneven distribution of CeO2 nanoparticles. Bioresource Technology 248: 75-81
  9. T Antal, et al. 2018. Chlorophyll fluorescence induction and relaxation system for the continuous monitoring of photosynthetic capacity in photobioreactors. Physiologia Plantarum.
  10. SB Ouada, et al. 2018. Effect and removal of bisphenol A by two extremophilic microalgal strains (Chlorophyta). Journal of Applied Phycology 6: 1-12

 

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