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FL6000双调制叶绿素荧光测量仪
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北京易科泰生态技术有限公司成立于2002年，为中关村高新技术企业，致力于生态-农业-健康研究监测技术推广、研发与服务，特别是在光谱成像技术（高光谱成像技术、叶绿素荧光成像技术、红外热成像技术、无人机遥感等）、植物表型分析技术、呼吸与能量代谢测量技术等方面，与专业企业PSI、Specim、Sable等合作，致力于植物科学、土壤与地球科学、动物能量代谢、水体与藻类及生态环境领域先进仪器技术的引进推广和技术研发集成，为植物/作物表型分析、生态修复及生态保护、能量代谢测量等提供规划设计、技术方案与系统集成、技术咨询与科技服务。公司技术团队80％以上具备硕士或硕士以上学位，并与*研究生院、中科院植物研究所、中科院动物所、中科院地理科学与资源研究所、中国农科院、中国林科院、中国环科院、中国水科院、清华大学、中国农业大学、北京林业大学、北京大学、中国海洋大学、陕西师范大学、内蒙古大学等建立了长期的技术合作交流关系。
公司下设有叶绿素荧光技术与植物表型业务部、EcoTech®实验室、光谱成像与无人机遥感事业部及无人机遥感研究中心（与陕西师范大学合作建立）、动物能量代谢实验室、内蒙古阿拉善蒙古牛生态牧业研究院及青岛分公司。实验室拥有叶绿素荧光成像、叶绿素荧光仪、水体藻类荧光仪、SPECIM高光谱仪、WORKSWELL红外热成像仪、EasyChem全自动化学分析仪、MicroMac1000水质在线监测系统、ACE土壤呼吸自动监测系统、SoilBox便携式土壤气体通量测量系统、动物呼吸测量系统、LCpro 光合作用测量仪、Hood土壤入渗仪、年轮分析仪等各种仪器设备，可以进行实验研究分析、实验培训等，欢迎与易科泰生态研究室开展合作研究。
易科泰公司与欧洲PSI公司（叶绿素荧光技术与表型分析技术）、美国SABLE公司（动物能量代谢技术）、欧洲SPECIM公司（高光谱成像技术）、欧洲WORKSWELL公司（红外热成像技术）、欧洲ATOMTRACE公司（LIBS元素分析技术）、欧洲BCN无人机遥感中心、欧洲ITRAX公司（样芯密度扫描与元素分析）、美国VERIS公司、英国ADC公司、德国UGT公司、欧洲SYSTEA公司等著名生态仪器技术领域的研发机构和厂商建立了密切的合作关系，在FluorCam叶绿素荧光成像与荧光测量技术、PlantScreen植物表型分析技术、高光谱成像技术、红外热成像技术、光合作用与植物生理生态研究监测、土壤呼吸与碳通量研究监测、动物呼吸代谢测量、水质分析与藻类研究监测、CoreScanner样芯密度CT与元素分析技术、LIBS元素分析技术、无人机生态遥感技术等生态仪器技术及其系统方案集成有着丰富的经验，成为我国农业、林业、地球科学、生态环境研究等领域科技进步的重要研究技术支持力量。由公司研制生产的EcoDrone®无人机遥感平台、SoilTron®多功能小型蒸渗仪技术、SoilBox®土壤呼吸测量技术、PhenoPlot®轻便型作物表型分析系统、SCG-N土壤剖面CO2／O2梯度监测系统、植物生理生态监测技术、动物能量代谢测量技术等，在中科院修购项目、*学科群项目、CERN网络（生态系统监测网络）等项目中发挥重要作用。
“工欲善其事，必先利其器”，易科泰公司将秉承“利其器，善其事”的经营理念，为国内生态-农业-健康研究与发展提供优秀的技术方案和服务。
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详细信息
FL6000双调制叶绿素荧光测量仪是FL3500双调制叶绿素荧光仪的非常新升级版，专门用于对蓝绿藻或绿藻等微藻，叶绿体或类囊体悬浮物进行光合作用深入机理研究的强大科研工具。FL6000双调制叶绿素荧光测量仪具备双通道测量控制，可控制测量样品的温度，并配备单翻转光（STF），内置多种可用户自行修改的测量程序，可进行目前上对于叶绿素荧光的各种深入机理研究。其核心结构是包含了一个悬浮液标准样品杯的光学测量头，内置3组LED光源和1个500 kHz/16位 AD 转换的PIN二极管信号检测器。AD转换的增益和积分时间可以通过软件控制。检测器测量叶绿素荧光信号的时间分辨率可高达4 µs（快速版为1µs）。
应用领域：
· 植物光合特性和代谢紊乱筛选
· 生物和非生物胁迫的检测
· 植物抗胁迫能力或者易感性研究
· 代谢混乱研究
· 光合系统工作机理研究
· 受胁迫植物光合生理应对策略研究
典型样品：
· 蓝藻（蓝细菌）
· 绿藻
· 叶绿体悬浮物
· 类囊体悬浮物
· 植物碎片
功能特点：
· 内置叶绿素荧光诱导测量、PAM（脉冲调制）测量、OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换、叶绿素荧光淬灭等测量程序，是*的功能为全面的叶绿素荧光仪
· 双调制技术，可双色调制测量光，具备调制光化学光和持续光化学光，可进行STF（单周转光闪）、TTF（双周转光闪）和MTF（多周转光闪）及定制FRR技术（Fast Repetition Rate）测量
· 标准版时间分辨率达4µs，快速版更高达1µs，是目前时间分辨率非常高的叶绿素荧光仪
· 控制单元为双通道，可连接温度传感器用于温度控制、连接氧气测量单元用于希尔反应测量等
· 具备*灵敏度，低检测极限为1μg Chla/L
· 测量光、光化光、饱和单反转光光源颜色、强度均可定制
· 主机配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图
技术参数：
· 实验程序：叶绿素荧光诱导测量；PAM（脉冲调制）测量；OJIP快速荧光动力学测量；QA–再氧化动力学；S状态转换；快速叶绿素荧光诱导
· 荧光参数：
ú PAM荧光淬灭动力学测量：F0，Fm，Fv，F0’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多项叶绿素荧光参数与曲线；
ú OJIP快速荧光动力学测量：OJIP曲线与F0、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F0、Fv / F0、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P0、Psi_0、Phi_E0、Phi_D0、Phi_Pav、ABS / RC、TR0 / RC、ET0 / RC、DI0 / RC等20多项相关参数；
ú QA–再氧化动力学（QA- reoxidation kinetics）：测量QA–再氧化动力学曲线，用于拟合QA–再氧化过程中快相（Fast phase）、中间相（Middle phase）和慢相（Slow phase）各自的振幅（A1，A2，A3）和时间常数（T1，T2，T3）
ú S状态转换（S-state test）：S-state test荧光衰减曲线，用于拟合计算无活性光系统II （PSIIX）反应中心数量
ú 提供用户自定义protocol功能，可实现PSII天线异质性PSIIα与PSIIβ分析、PSII有效天线截面积（s PSII）等参数的测量（仅限快速版）
QA–再氧化动力学曲线和S-state test荧光衰减曲线（Li，2010）
· 时间分辨率（采样频率）：高灵敏度检测器，标准版时间分辨率为4µs，快速版为1µs
· 低检测极限：1μg Chla/L
· 控制单元：配备彩色触摸显示屏，可实时查看荧光曲线图
· Superhead测量室：
o 测量光闪：617nm红橙光和455nm蓝光，光闪时间2–5µs
o 单周转饱和光闪：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，大光强80000 µmol(photons)/m².s，光闪时间20–50µs
o 持续光化学光：标准光源为630nm红光，可选配455nm蓝光，任选其一，大光强3000 µmol(photons)/m².s
o 样品试管：底面积10×10mm，容积4ml
o AD转换器：500 kHz/16–bit
· 定制superhead测量室（选配）：可分别定制测量光、饱和光闪和光化学光颜色（蓝色、青色、琥珀色等）以及检测波段（ChlA，ChlB）
· 远红外光源（选配）：用于激发光系统I，波长735nm
· 氧气测量模块（选配）：测量藻类的氧气释放
· 温度控制（选配）：TR 2000温度调节器，控温范围0–70℃，精确度0.1℃
· 电磁搅拌（选配）：密封不锈钢外壳，IP64防护等级，手动转扭调速100-1000rpm，8mm×3mm标准磁力棒
· 通讯接口：USB
· FluorWin软件：定义或创建实验方案、光源控制设置、数据输出、分析处理和图表显示
典型应用：
1. 中科院水生生物所王强研究员使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）和TL植物热释光系统证明亚硝酸盐胁迫首先影响Synechocystis sp. PCC 6803 PSII受体侧(Zhan X, et al, 2017)。这种光合作用深入机理的研究经常需要这两种仪器来配合完成。
2.中科院新疆生态与地理研究所潘响亮研究员及其课题组使用FL3500叶绿素荧光仪（FL6000之前型号）深入开展了环境中重金属、盐分、有毒化合物、除草剂、杀虫剂、抗生素等各种有害物质对藻类的毒理研究。通过FL3500*的高分辨率OJIP快速荧光动力学测量、QA–再氧化动力学、S状态转换等叶绿素荧光测量程序，全面揭示了不同浓度与处理时间对藻类光合系统造成损伤的毒理机制及其生态影响。目前，潘响亮课题组已经使用FL3500（FL6000之前型号）在SCI期刊与国内核心期刊上发表了二十余篇高水平文章。
产地：捷克
部分参考文献：
- Manaa A., et al. (2019) Salinity tolerance of quinoa (Chenopodium quinoa Willd) as assessed by chloroplast ultrastructure and photosynthetic performance. Environmental and Experimental Botany, Volume 162, Pages 103-114
- Sicora C. I., et al. (2019) Regulation of PSII function in Cyanothece sp. ATCC 51142 during a light–dark cycle. Photosynthesis Research, Volume 139, Issue 1–3, pp 461–473
- Smythers A. L., et al. (2019) Characterizing the effect of Poast on Chlorella vulgaris, a non-target organism. Chemosphere, Volume 219, Pages 704-712
