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10186ES70 全血直接PCR试剂盒
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生产厂家企业简介
翌圣生物科技(上海)股份有限公司【Yeasen Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd.】是一家以蛋白质改造和酶进化技术为驱动,聚焦生命科学产业链上游核心原料,从事分子、蛋白和细胞三大品类生物试剂的研发、生产与销售的高新技术企业,通过打通分子酶、蛋白、抗体、核酸、细胞的技术开发路径,成为国内少数同时覆盖三大品类生物试剂、兼备核心技术自主研发能力和规模化生产能力的高新技术企业,产品广泛应用于生命科学研究领域、诊断与检测领域和生物医药领域。
主营业务
公司凭借在蛋白质改造和酶进化领域的技术优势和深耕生物试剂行业多年积累的丰富经验,构建了品质优良、类型齐全、种类丰富的产品管线。自公司成立以来,公司研发、生产和销售的生物试剂超过3000种,涵盖分子、蛋白、细胞三大品类的生物试剂,能够满足客户多种类型生物试剂的一体化采购需求。公司核心产品覆盖qPCR系列、NGS系列、逆转录系列、核酸提取与纯化系列、PCR系列、分子克隆系列、体外转录系列、抗体、蛋白纯化系列、蛋白分析系列、重组蛋白、细胞分析系列、细胞培养系列、细胞转染系列、报告基因检测系列等多个品类的生物试剂,广泛应用于生命科学研究、诊断检测和生物医药等领域。
发展历程
荣誉资质
翌圣生物通过申请商标和软件著作权的方式保障核心技术和市场竞争力,不断加强公司品牌建设。截至2022年3月31日,公司已经获得授权18项(其中发明14项、实用新型1项、外观设计3项)和45项与生物试剂相关的软件著作权,拥有经国家知识产权局商标局核准的注册商标权37项以及4项境外注册商标,是国家高新技术企业和上海市专精特新企业。
创新平台
经过多年的产品研发技术经验的沉淀以及持续的研发创新,翌圣生物积极开展“产学研”合作,与拥有生物催化与酶领域国家重点实验室的湖北大学、拥有教育部工业生物领域重点研究基地的江南大学展开合作,优化生物试剂关键原料的生产和表达工艺。翌圣生物以基因工程技术、生物信息技术、细胞生物学技术、免疫学技术、生化分析技术等生命科学领域的共性生物技术为基础,建立了六大核心技术平台——双向分子酶理性设计与定向进化平台、密度发酵与超洁净纯化平台、分子诊断试剂关键原料研发平台、高通量测序建库试剂创新研发平台、高性能单克隆抗体研发平台和mRNA医药应用研发平台,目前已经自主研发出20项核心技术,打通分子酶、蛋白、抗体、核酸、细胞的技术开发路径,覆盖技术研发、产品升级、规模生产和质量控制等生物试剂研发和生产的各关键环节。
工业化生产
翌圣生物拥有按照准GMP 标准建设运营的工业化生产基地,配有吨级发酵线、工业级 AKTA 纯化线和全自动包装线。同时,公司通过了ISO 13485:2016质量管理体系认证,从原料控制、生产管理、质检管控、仓储运输等对生产线进行360度管理监督,保证产品过程的可控制性及可追溯性,竭尽全力为您提供可靠的产品。
客户服务
翌圣生物凭借优质稳定的产品质量、高效及时的响应能力、快速稳定的交付能力和周到完备的售后服务获得了众多科研用户和工业用户的认可,为检测公司、治疗公司、工具类公司和科学研究实验室提供应用于科学研究、体外诊断、基因测序、生物医药等的生物试剂。与中国科学院、清华大学、北京大学、复旦大学、上海交通大学、浙江大学等顶尖科研院所和华大基因、恒瑞医药、药明康德、之江生物、圣湘生物、斯微生物、金斯瑞、思路迪等工业客户建立了稳定、紧密的合作关系,公司产品被多次使用在Nature、Science、Cell等国际顶级期刊论文发表中。
公司企业文化
帮助客户创造价值,让世界更健康更快乐
◎ 成为生命科学工具领域全球Top⑩
◎ 具备驱动产业变革的技术创新能力
◎ 拥有一支持续学习型的翌圣铁军
翌圣生物始终秉承“帮助客户创造价值,让世界更健康更快乐”的使命,专注于技术创新和产品升级,不断拓展核心技术的应用领域,为客户提供更为的产品与服务,助力我国打造自主可控的生物试剂产业链。同时,翌圣生物将进一步推进国际化战略,继续布局和拓展海外市场,为全球生物试剂产业发展贡献力量。
产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) |
Animal Blood Direct PCR Kit (With Dye) 全血直接PCR试剂盒 | 10186ES50 | 50 T | 323.00 |
Animal Blood Direct PCR Kit (With Dye) 全血直接PCR试剂盒 | 10186ES70 | 200 T | 983.00 |
产品描述
全血直接PCR试剂盒是一款可以直接对全血样本进行PCR扩增的试剂盒,无需DNA提取或样品处理,大大降低了污染风险,缩短了检测时间。
试剂盒中包含配方优化的2× Blood Master Mix,具有很强抑制物耐受性,人血的模板大加入量可达45%,鼠血的可达20%,可以灵敏的扩增血液样本中基因组和外源目的DNA篇段。2× Blood Master Mix包含了用于PCR扩增除模板和引物外的所有组分,扩增产物末端加A,适用于Hieff Clone®快速克隆试剂盒(货号:10907ES60/10908ES60)。
该试剂盒可用于直接扩增的血样类型包括:新鲜血液、4℃贮存血液、冷冻血液以及储存在Whatman 903®和FTA®商用卡上的干xue渍,且兼容所有常规抗凝剂(EDTA、柠檬酸盐、肝素等)。适用样本来源包括人血、鼠血、鸡血、鸟血、牛血、狗血等。
产品组分
编号 | 组分 | 产品编号/规格 | |
10186ES50(50T) | 10186ES70(200T) | ||
10186-A | 2× Blood Master Mixa | 500 µL | 1 mL× 2 |
a)2× Blood Master Mix:包含Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、MgCl2、PCR反应增强剂、优化剂以及稳定剂等,产品已混合溴酚蓝染料(不含SDS),PCR产物可以直接进行电泳。
运输和保存方法
冰袋运输。-20℃保存。避免反复冻融。
操作方法
1. PCR反应体系配制
组分 | 体积(μL) | 体积(μL) | 终浓度 |
2× Blood Master Mix | 10 | 25 | 1× |
Forward Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2 μM |
Reverse Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2 μM |
抗凝全血 | X | X | - |
ddH2O | To 20 | To 50 | - |
【注】:使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。
a)模板使用量:进行基因组上的目的片段检测,建议使用少量的血液量作为模板;检测血液样本中某种病毒或细菌等的目的片段,建议扩大PCR体系并使用较大量的血液模板。血液模板多占PCR体系的45%(人血)、20%(鼠血)。若模板使用含有血液的采集卡,可截取直径1-4 mm的血点,直接加入20-50 μL PCR反应体系进行扩增。
b)引物浓度:通常引物终浓度为0.2 μM,也可以根据情况在0.1-0.5 μM之间进行调整。
c)反应体系:推荐使用20 μL或 50 μL,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
d)体系配制:配制好PCR反应体系,置于涡旋仪上涡旋混匀,瞬时离心将反应液集于管底。
2. PCR反应条件设置
循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 95℃ | 5 min | 1 |
变性 | 95℃ | 10 sec | 30-40 |
退火 | 50℃~65℃ | 20 sec | |
延伸 | 72℃ | 30 sec/kb | |
终延伸 | 72℃ | 5 min | 1 |
【注】: a)预变性:95℃,5 min可以让白细胞裂解,释放可用于PCR扩增的基因组DNA。请勿缩短时间或降低温度。
b)退火温度:退火温度设置为引物Tm值即可。然而,使用高的退火温度可以有效减少非特异性扩增,并提高全血模板的扩增效率。因此,如扩增产物特异性较差,可以建立一个温度梯度反应去寻找引物模板适退火温度。
c)延伸时间:按30 sec/kb设定,如不足30 sec,设置30 sec即可。
d)扩增循环数:35个循环已可以扩增足量产物。太多的循环将会导致非特异性扩增增加。
3. 扩增产物分析
PCR完成后,建议将反应液于1000× g (大约4000 rpm) 离心1~3 min以沉淀血细胞碎片,之后取上清进行下游分析。该步骤可有效去除多种血液组分。当使用高浓度血液模板时此步尤为重要,因为经过PCR循环,反应管中会存在大量的血细胞碎片。这些碎片会干扰下游的检测,如琼脂糖电泳检测。注意:由于血液本身的原因,PCR 结束后在 PCR 管的底部会出现透明凝胶状物质,此为正常现象。
4. 对照反应
在PCR结果分析时,不管是阳性结果或阴性结果,如果没有对照反应,都不能确定结果是否可靠。为了便于后续实验结果的分析,建议在进行PCR时,设置阳性和阴性PCR对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰。
4.1 阳性对照反应体系
组分 | 体积(μL) | 体积(μL) | 终浓度 |
2× Blood Master Mix | 10 | 25 | 1× |
Forward Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2 μM |
Reverse Primer (10 μM) | 0.5 | 1 | 0.2 μM |
模板DNA | X | X | 100-200 ng |
ddH2O | To 20 | To 50 | - |
【注】:a)模板DNA:选用样本纯化的DNA。
b)引物的选择:建议选择该样本较易扩增的基因的引物,如 β-actin 基因或 GAPDH 等。
4.2 阴性对照
PCR反应体系被污染会导致PCR结果出现假阳性,需要设置阴性对照来排除。将使用的移液器枪头浸泡在2× Blood Master Mix中,添加引物,ddH2O进行PCR扩增;另取ddH2O作为模板,用目的基因引物进行PCR扩增,以排除PCR体系是否被污染和实验是否有其他污染源。
注意事项
1. 尽量使用新鲜抗凝血。若冻存血,应避免反复冻融。
2. 解冻后2× Blood Master Mix可能出现浑浊,冰上放置1-2 min,待溶液澄清后,上下颠倒混匀,不影响试剂性能。
3. 建议扩增片段长度1 kb以内,以便扩增效率*。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
常见问题与解决方法
常见问题 | 可能原因 | 解决方法 |
阳性对照、待测样本均无条带。 | PCR反应体系或反应条件不合适。 | 使用梯度PCR摸索PCR *反应条件。 |
PCR试剂保存不当失去活性。 | 2× PCR Mix应保存于-20℃,使用时避免反复冻融。若使用频繁,可在4℃短时间存放。 | |
引物设计问题。 | 尝试重新设计引物进行检查。 | |
阳性对照有目的条带,待测样本无条带或条带弱。 | 血液样本保存不当,基因组DNA降解。 | 抗凝全血可在4℃保存2-8天,需长时间保存可将样本置于在-20℃或-70℃冻存,并避免反复冻融。 |
模板加入量不适合。 | 可在PCR体系10%-30%范围内优化血液加入量;若是扩增血液样本中的病毒或细菌DNA篇段,可将模板量增加至30%-40%。 | |
PCR循环数不足。 | 适当增加PCR的循环数,推荐在35-40循环为佳。因为模板复杂,一般PCR反应要比用纯化的 DNA模板多5-10个循环为佳。 | |
非特异性扩增 | PCR退火温度太低,循环数、引物浓度或模板浓度太高。 | 增加PCR退火温度,降低PCR循环数、引物浓度或模板浓度。 |
PCR引物错配。 | 重新设计PCR引物。 | |
配制PCR反应体系时温度太高或配制完成后放置时间太久。 | PCR反应体系的配制在低温下进行,配制完成后尽快进行PCR扩增反应。 | |
阴性对照出现目的条带 | 操作工具或试剂污染。 | 实验所有试剂或器材均应高压灭菌。操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。 |
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