专业的浮游植物分析便携式流式细胞仪,满足实验室、野外在线监测和水下应用 根据需要,CytoSense可升级为CytoBuoy或CytoSub。
荷兰CytoBuoy公司是一家受欧盟资助、专业生产浮游植物流式细胞仪的公司。
传统的流式细胞仪只能分析较小的细胞(< 15 mm),不适合分析体积较大的浮游生物细胞。从1986年开始,该公司就受荷兰和欧盟资助,设计生产专为浮游生物分析设计的流式细胞仪——光学浮游生物分析仪(Optical Plankton Analyser,OPA)。
1996年,该公司提出了设计野外在线监测型流式细胞仪的理念,并连续10年获得欧盟资助。在此基础上,该公司设计生产了*台便携式浮游植物分析流式细胞仪——CytoSense,*台在线监测型流式细胞仪——CytoBuoy,以及*台水下流式细胞仪——CytoSub。其中CytoSense的特殊版本CytoSense GV型,可以直接分析带气囊的微藻样品(如微囊藻、棕囊藻等),省去了破碎气囊的复杂步骤。
根据需要,CytoSense可升级为CytoBuoy或CytoSub。CytoBuoy可以无线传输数据,传输距离达16 Km。CytoSub可以在水下200 m处正常工作。
新增“指纹”功能可以建立浮游植物数据库,利用流式细胞仪进行浮游植物分类。
新增成像功能可以对感兴趣的细胞进行拍照,获取浮游植物细胞图片。
CytoBuoy便携式流式细胞仪可对水中从pico-(<1 mm)到meso-(>100 mm)级的浮游植物自动计数,测量样品或亚群的颗粒数目和浓度,光学特性,颗粒长度和形状,并可对多个类群进行分类。
分类类群包括:
1)蓝藻:聚球藻、丝状蓝藻等
2)pico-级和micro-级真核生物
3)不同类型的大型种和硅藻:单个细胞、两个细胞或链状细胞等
4)隐藻
5)颗石藻或其颗石
6)非荧光细胞和非荧光颗粒
仪器特点: 1) 在线分析,样品不需固定、运输和储藏 2) 不需采用过滤或其它方法来对样品分级 3) 样品不需浓缩或稀释 4) 仪器自动测量,操作者不会干扰测量 5) 不需额外提供鞘液 6) 不需提供空气 7) 没有流路堵塞 8) 流路不会发生生 物污染9) 便携、易运输、防水或防溅水 10) 防震、防抖、耐冲击 | 应用范围 :1) 海洋生态学与淡水生态学 2) 海洋学与湖沼学 3) 河流、水库、湖泊、海洋的监测与管理 4) 流域监测与管理 5) 水源地、水厂、污水处理厂的水质监测 6) 富营养化研究 7) 藻类环境生物学 8) 藻种鉴定 9) 有害藻华(HABs)预警 10) 校正卫星遥感数据 11) 微藻生物技术 12) 水产养殖 |
特征
当细胞颗粒在流动池中通过检测区域时,CytoBuoy系列流式细胞仪可以扫描记录各种光学信号(散射、荧光)的动态变化(*),这些信号包涵了丰富的细胞形态学信息,利用这些形态学信息可以建立浮游植物特征信息数据库,进而利用CytoBuoy进行浮游植物的详细分类,有助于了解浮游植物的种群变化和水华预警。
| CytoBuoy系列流式细胞仪还增加了获得长条装细胞(或细胞链)弯曲度的功能,这种新增加的二维信息为浮游植物分类提供了更全面的信息。 |
功能强大的分析软件
主要技术指标
样品类型: | 所有悬浮液中的显微颗粒,包括细胞性颗粒和非细胞性颗粒;特别适合于浮游植物研究,单细胞、群体皆可。 |
样品大小下限: | 标准版:1 m mpico版:0.4 mm |
样品大小上限: | 直径:700 m m长度:4 mm |
样品密度: | 接近于水;沉降速率很高(>10 mm/s)的颗粒(如砂粒)不会被吸入流动室测量 |
样品浓度下限: | 约102个颗粒/升 |
样品浓度上限: | 约1010个颗粒/升 |
介质: | 水,盐度范围介于海水和淡水之间的所有水均可 |
进样方式: | 泵吸式,适用于所有机型 |
进样速度: | 20 ml/s或2 ml/s |
鞘液: | 无需外加鞘液,仪器直接利用样品的过滤液作为鞘液,维护方便 |
测量指标: | 1)每个亚群或每个样品的颗粒数目和浓度 2)每个颗粒、每个亚群或整个样品的光学参数:前向光散射(FSC)、侧向光散射(SSC)、荧光(zui多4个色带) 3)每个颗粒、每个亚群或整个样品的颗粒长度,zui大可达10 mm,精度0.5 mm 4)每个颗粒、每个亚群或整个样品的形态学信息,例如链状硅藻的弯曲度和细胞数目等 5)软件(CytoQuickView和CytoClus)可利用细胞的形态学信息进行浮游植物分类,利用易发生水华的藻种的形态学信息有助于进行水华预警 |
仪器重量: | CytoSense:20 Kg(包括外壳 )CytoBuoy和CytoSub视浮标或防水外壳的重量而定 |
代表文献(1) Dubelaar G. B. J., Gerritzen P. L., Beeker A. E. R., Jonker R. R., Tangen K., Designfirst results of CytoBuoy: a wireless flow cytometer for in situ analysis of marinefresh waters. Cytometry, 1999, 37: 247-254.
(2) Dubelaar G. B. J., Jonker R. R., Flow cytometry as a tool for the study of phytoplankton. Sci. Mar., 2000, 64: 135-156.
(3) Dubelaar G. B. J., Gerritzen P. L., CytoBuoy: a step forward towards using flow cytometry in operational oceanography. Sci. Mar., 2000, 64: 255-265.
(4) Dubelaar G. B. J., Geerders P. J. F., Jonker R. R., High frequency monitoring reveals phytoplankton dynamics. J. Environ. Monit., 2004, 6: 946-952.
(5) Dubelaar G. B. J., Geerders P. J. F., Innovative technologies to monitor plankton dynamics. Scanning flow cytometry: a new dimension in real-time, in-situ water quality monitoring. Sea Technol., 2004, 15-21.
(6) Takabayashi M., Wilkerson F. P., Robertson D., Response of glutamine synthetase gene transcriptionenzyme activity to external nitrogen sources in the diatom Skeletonema costatum (Bacillariophyceae). J. Phycol., 2005, 41: 84-94.
(7) Takabayashi M., Lew K., Johnson A., Marchi A., Dugdale R., Wilkerson F. P., The effect of nutrient availabilitytemperature on chain length of the diatom, Skeletonema costatum. J. Plankton Res., 2006, 28: 831-840.
(8) Dubelaar G. B. J., Casotti R., Tarran G. A., Biegala I. C., Phtoplanktontheir analysis by flow cytometry. In. Dolezel J., Greilhuber J., Suda J. (eds.) Flow Cytometry with Plant Cells. Wiley-VCH Verlag GmbH & Co. KGaA, Weinheim. 2007.