蛋白质含量测定法
时间:2017-09-25 阅读:4009
蛋白质含量测定法,是生物化学研究中常用、基本的分析方法之一。目前常用的有四种古老的经典方法,即定氮法,双缩尿法(Biuret法)、Folin-酚试剂法(Lowry法)和紫外吸收法。另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法,即考马斯亮蓝法(Bradford法)。其中Bradford法和Lowry法灵敏度高,比紫外吸收法灵敏10~20倍,定氮法虽然比较复杂,但较准确,往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
值得注意的是,这后四种方法并不能在任何条件下适用于任何形式的蛋白质,因为一种蛋白质溶液用这四种方法测定,有可能得出四种不同的结果。每种测定法都不是无缺的,都有其优缺点。在选择方法时应考虑:①实验对测定所要求的灵敏度和度;②蛋白质的性质;③溶液中存在的干扰物质;④测定所要花费的时间。
folin—酚试剂法早由lowry确定了蛋白质浓度测定的基本步骤。以后在生物化学领域得到广泛的应用。这个测定法的优点是灵敏度高,比双缩脲法灵敏得多,缺点是费时间较长,要控制操作时间,标准曲线也不是严格的直线形式,且专一性较差,干扰物质较多。对双缩脲反应发生干扰的离子,同样容易干扰lowry反应,而且对后者的影响还要大得多。考马斯亮蓝法(Bradford法),由于其突出的优点,正得到越来越广泛的应用. 索莱宝公司提供的Bradford 蛋白浓度测定试剂盒可以用于蛋白质含量测定,简单快速。
Bradford 蛋白浓度测定试剂盒
货号:PC0010
规格:2500T
保存:开封使用后请密封保存,本试剂盒自订购之日起九个月内有效。
产品内容:
组成 包装(2500微孔) 保存
5×G250 染色液 100ml 2-8℃
PBS稀释液 30ml 2-8℃
蛋白标准(5mg/ml BSA) 1ml -20℃
产品简介:
考马斯亮兰G-250 染料,在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料的大吸收峰的位置(Imax),由 465nm变为 595nm,在一定的浓度范围内,测定的吸光度值 A595 与蛋白质浓度成正比。Bradford 法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响,样品中巯基乙醇的浓度可高达 1M,二硫苏糖醇的浓度可高达 5mM,但受略高浓度的去垢剂影响,需确保 SDS 的浓度低于 0.1%,Triton X-100 低于 0.1%,Tween 20, 60, 80 低于0.06%。含去垢剂的样品推荐使用索莱宝生产的 BCA蛋白浓度测定试剂盒。
操作说明:操作说明:
一.微孔酶标仪法
1. *溶解蛋白标准品,取 10ul,稀释至 250ul ,使终浓度为 0.2mg/ml。待测蛋白样品在什么溶液中,标准品也宜用什么溶液稀释。但是为了简便起见,也可以用 0.9%NaCl或 PBS 稀释标准品。
2. 5×G250 染色液使用前请颠倒 3-5 次混匀,取 1ml 5×G250 染色液,加入 4ml 双蒸水,混匀成 1×G250染色液,此 1×G250 染色液可在 4℃保存一周。
3. 将标准品按 0,2,4,6,8,12,16,20 微升分别加到 96 孔板中,加 PBS 稀释液补足到 20 微升。
4. 将样品作适当稀释(好多做几个梯度,如作2 倍、4 倍、8 倍稀释),加 20 微升到96 孔板的样品孔
中。由于移液器在取小量时的误差,标准线前面的点可能不很准确,所以尽可能的让样品点落在标准线1/2 后。
5. 各孔加入 200 微升稀释后的 1×G250染色液,室温放置 3-5 分钟。
6. 用酶标仪测定 A595,或560-610nm之间的其它波长的吸光度。
7. 根据标准曲线计算出样品中的蛋白浓度。
二.分光光度计法
如无酶标仪,染色反应可在离心管中进行,反应液混匀后加入比色皿中,使用分光光度计测定吸光值。
步骤如下:
1. 取八支(或者更多)干净的 10ml 离心管,标记上号。
2. 取 100ulBSA加入 PBS 2.4ml 稀释至终浓度为 0.2mg/ml。
3. 5×G250 染色液使用前请颠倒 3-5 次混匀,取 10ml 5×G250 染色液,加入 40ml 双蒸水,混匀成 1×G250 染色液,此 1×G250 染色液可在 4℃保存一周。
4. 按下表加入试剂(以每孔 5ml 计,多余的用来清洗比色皿)
离心管号 1 2 3 4 5 6 7(样品管 1) 8(样品管 2) 9(样品管 3)
标准蛋白 BSA 0ul 100ul 200ul 300ul 400ul 500ul 500ul 适当稀
释的样品 1
500ul 适当稀
释的样品 2
……
PBS 500ul 400ul 300ul 200ul 100ul 0ul 0ul 0ul 0ul
1XG250 染色液 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml 5ml
5. 反应 3 分钟后测 OD 值。为了实验的准确性,可每间隔 2 分钟加一管染色液,每间隔 2 分钟测一管 OD
值。如下表:
离心管号 1 2 3 4 5 6 7 8 ……
加染色液(分钟) 0 2 4 6 8 10 12 14 ……
测 OD值 3 5 7 9 11 13 15 17 ……
考马斯亮蓝法(Bradford法),由于其突出的优点,正得到越来越广泛的应用。