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病毒RNA提取试剂盒操作步骤说明书

时间:2022-06-13      阅读:1679

  

病毒RNA提取试剂盒说明书

 

RNApure Virus Kit

 

目录号:K0586

 

运输条件:室温(15-25℃)。

 

保存条件:室温(15-25℃)。

 

组分说明

 

                    Size                            50

                    Buffer RLV                     15 ml

                    Buffer RW1                     40 ml

                    Buffer RW2concentrate)        11 ml

                    Proteinase K                  12.5 mg

                    Proteinase K Storage Buffer   1.25 ml

                    RNase-Free Water               10 ml

                    Spin Column RS                  50

                    Collection Tube1.5 ml)         50

                    Collection Tube2 ml)           50

 

              本产品仅供科研使用,请勿用于临床诊断及其他用途  

 

产品简介

 

  本试剂盒采用可以特异性结合病毒 RNA的吸附柱和*的缓冲液系统,适用于从血清、血浆、尿液、脑脊液等无细胞体液及细胞培养上清液中分离病毒RNA。病毒RNA特异性地结合到硅基质膜上,而污染物则流过该膜。通过两次高效洗涤*去除蛋白质等杂质,然后用无RNase的水或试剂盒提供的RNase-Free  Water洗脱高纯度的病毒RNA。由本试剂盒提取的病毒RNA可直接用于RT-PCRReal-time  RT-PCR和印迹分析等实验。

 

自备试剂:无水乙醇,0.9% NaCl

 

实验前准备及重要注意事项

 

1.向Proteinase K中加入1.25 ml Proteinase K Storage Buffer使其溶解,-20℃保存。配制好的Proteinase  K勿长时间室温放置,避免反复冻融,以免影响其活性。

2.预防RNase污染,应注意以下几方面:

   1)使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。

   2)玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸10分钟,用水*冲洗后高压灭菌。

   3)配制溶液应使用无RNase的水。

   4)操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。

3.血清或血浆避免反复冻融导致蛋白变性或产生沉淀,减少病毒滴度进而影响提取病毒核酸的产量。

4.第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。

5Buffer RLV如果产生沉淀,可在56℃加热使其溶解后室温放置。

6.所有离心步骤若无特殊说明均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。

 

操作步骤

 

1.室温下取200 μl血清或血浆加到1.5 ml离心管(自备)中。

   注意:不足200 μl可以加入0.9 % NaCl(客户自备)补足。

2.向上步溶液中加入20 μl Proteinase K,混匀。

3.加入200 μl Buffer RLV,涡旋震荡15秒。

 

   注意:不要直接把Proteinase K加到Buffer RLV中。

456℃孵育15分钟,短暂离心,将管壁上的溶液收集到管底。

5.加入250 μl无水乙醇,涡旋震荡15秒,室温孵育5分钟,短暂离心,将管壁上的溶液收集到管底。

6.将步骤5得溶液全部加入到已装入收集管(Collection  Tube 2  ml)的吸附柱(Spin Column RS)中,若一次不能将全部溶液加入吸附柱中,请分两次转入,8,000 rpm~6000 ×g)离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

7.向吸附柱中加入500 μl Buffer RW18,000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

8.向吸附柱中加入500 μl Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇),8,000  rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

9.向吸附柱中加入500 μl无水乙醇,8,000 rpm离心1分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。

10.12,000 rpm (~13,400×g)离心3分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟,以*晾干。

 

   注意:1)这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。

 

   2)推荐步骤:将吸附柱放入一个新的1.5 ml离心管(自备)中,打开管盖,56℃烘箱孵育3分钟,使吸附柱的膜*干燥。

11.将吸附柱置于一个新的无RNase离心管(Collection Tube 1.5  ml)中,向吸附柱的中间部位悬空加入20-50 μl RNase-Free Water,室温放置5分钟,12,000 rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。

 

   注意:1RNase-Free Water体积不应小于20 μl,体积过小影响回收率。

   2)如果要提高RNA的产量,可用20-50 μl新的RNase-Free Water重复步骤11

 

   3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤11

 

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