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DNA/RNA提取试剂盒操作注意事项

时间:2022-07-19      阅读:1691

  

 

 

DNA/RNA提取试剂盒说明书

AllPureDNA/RNAKit

DNA/RNA提取试剂盒说明书

Cat.No.  K0590 

  保存:室温

 

组分说明

 

                                              Cat.No.               K0590



                                              KitSize                  50

                                            BufferRL                35ml

                                            BufferRW1                40ml

                                   BufferRW2concentrate           11ml

                                         RNase-FreeWater             10ml



                                    BufferGW1concentrate           13ml

                                   BufferGW2concentrate           15ml

                                             BufferGE                15ml



                                         SpinColumnDM                 50

                                        SpinColumnRM                 50

                                     CollectionTube1.5ml           100

                                     CollectionTube2ml            150

 

产品简介

 

      本试剂盒可用于从同一细胞或组织样本中同时纯化基因组 DNA 和总 RNA。由于不需要将样本分成两份用于不同的纯化步骤,该试剂盒可最大限度的回收 DNA RNA。纯化的 DNA RNA 被单独洗脱并可直接用于各种下游实验。本试剂盒中不包含苯酚和氯仿等有毒物质,无需乙醇沉淀,操作简单、快捷。基因组 DNA 可用于 PCRReal-timePCRSouthernBlotDotBlot、比较基因组杂交(CGH)、基因分析和 SNP 分析;总 RNA 可用于 RT-PCRReal-timeRT-PCRcDNA 的合成、NorthernBlotDotBlot 等分析。

 

注意事项

 

1.   预防RNase污染,应注意以下几方面:

1) 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。

 

2) 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5MNaOH中浸泡10分钟,用水*冲洗后高压灭菌。

3) 配制溶液应使用RNase-FreeWater

4) 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。

2.   样品应避免反复冻融,否则影响提取DNARNA的质量。样品在BufferRL中,可于-70℃保存一个月。

3.   BufferRL在使用前请加入β-巯基乙醇,1mlBufferRL10 μl β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的BufferRL室温可保存1个月。

4.   第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明在 BufferRW2BufferGW1 BufferGW2 中加入无水乙醇。

5.   使用前请检查 BufferRL 是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请于 56℃水浴重新溶解。

6.   所有离心步骤均使用台式离心机,室温下进行。

自备试剂:β-巯基乙醇(新开封或提取 RNA 专用)、70%乙醇(用无 RNase 的水配制)、无水乙醇

 

操作步骤

 

1.   材料处理

    1a. 贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液(最大提取量为107 个细胞), 收集细胞,弃尽培养液,加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),反复吹打使其充分裂解。

 注意:一定要弃尽培养液,否则影响裂解和后续的核酸纯化步骤。

    1b. 取不大于30mg的动物组织,液氮研磨成细粉末,加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),或直接加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),匀浆处理。

         注意:匀浆要充分,否则影响RNA产量。

 

2.   将上步所得溶液12,000rpm(~13,400×g)离心3-5分钟,小心的将上清加入到已装入收集管(2mlCollectionTube)的吸附柱(SpinColumnDM)中,12,000rpm离心30-60 秒,收集滤液。将吸附柱DM放在一个新的2ml收集管

     2mlCollectionTube)中,室温或4℃放置,待提DNA

     注意:确保吸附柱 DM上没有液体残留,如果有必要可以重复离心,直至所有的液体通过吸附柱DM的膜。总RNA提取

3.   向步骤2所得滤液中加入1倍体积的70%乙醇(无RNase的水配制),混匀。

4.   将上步所得溶液全部加入到已装入收集管(2mlCollectionTube)的吸附柱(SpinColumnRM)中,若一次不能全部加完溶液,可分次转入。12,000rpm离心20秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。

5.   向吸附柱RM中加入700 μlBufferRW1,12,000rpm离心20秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。

6.向吸附柱RM中加入500 μlBufferRW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm离心20, 倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。

7.   重复步骤6

8.   12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱RM置于室温数分钟,以*晾干。

     注意:此步骤目的是去除吸附柱RM中残余的乙醇,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。

9.   将吸附柱RM置于一个新的无RNase1.5ml离心管(CollectionTube1.5ml)中,向吸附柱RM的中间部位加入30-50μlRNase-FreeWater,室温放置2-5分钟,12,000rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。

注意:1RNase-FreeWate体积不应小于30 μl,体积过小影响回收率。

    2)如果要提高RNA的产量,可用30-50 μl新的RNase-FreeWater重复步骤9         

3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤9

 

基因组DNA 提取

 

10.  向吸附柱 DM 中加入 500 μlBufferGW1(使用前检查是否加入无水乙醇),12,000rpm  离心 20 秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱 DM 放回 2ml 收集管中。

11.  向吸附柱DM中加入500 μlBufferGW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱DM放回2ml 收集管中。

12.  12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱DM置于室温数分钟,以*晾干。

     注意:这一步的目的是将吸附柱DM中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。

13.  将吸附柱DM置于一个新的无RNase1.5ml离心管(CollectionTube1.5ml)中,向吸附柱DM的中间部位加入100 μlBufferGE,室温放置2-5分钟,12,000rpm离心2分钟,收集DNA溶液,-20℃保存DNA

注意:1BufferGE的体积不应小于100 μl,体积过小影响回收率。

   2)如果要提高DNA的产量,将100 μl新的BufferGE加至吸附柱上,重复步骤13

3)如果要提高DNA浓度,可以将步骤15所得的DNA洗脱液重新加至吸附柱上,重复步骤13

 

附表 1 吸附柱 DM 和吸附柱 RM 的规格说明

 

规格                   吸附柱 DM                 吸附柱 RM

 

最大结合能力          100µgDNA            100µgRNA

最大加样量               700µl               700µl

 

结合核酸分子量         DNA1530kb         RNA>200 核苷酸

最小洗脱体积              100µl                30µl

 

  

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