DNA/RNA提取试剂盒操作注意事项
时间:2022-07-19 阅读:1691
DNA/RNA提取试剂盒说明书
AllPureDNA/RNAKit
DNA/RNA提取试剂盒说明书
Cat.No. K0590
保存:室温
组分说明
Cat.No. K0590
KitSize 50
BufferRL 35ml
BufferRW1 40ml
BufferRW2(concentrate) 11ml
RNase-FreeWater 10ml
BufferGW1(concentrate) 13ml
BufferGW2(concentrate) 15ml
BufferGE 15ml
SpinColumnDM 50
SpinColumnRM 50
CollectionTube(1.5ml) 100
CollectionTube(2ml) 150
产品简介
本试剂盒可用于从同一细胞或组织样本中同时纯化基因组 DNA 和总 RNA。由于不需要将样本分成两份用于不同的纯化步骤,该试剂盒可最大限度的回收 DNA 和 RNA。纯化的 DNA 和 RNA 被单独洗脱并可直接用于各种下游实验。本试剂盒中不包含苯酚和氯仿等有毒物质,无需乙醇沉淀,操作简单、快捷。基因组 DNA 可用于 PCR、Real-timePCR、SouthernBlot、DotBlot、比较基因组杂交(CGH)、基因分析和 SNP 分析;总 RNA 可用于 RT-PCR、Real-timeRT-PCR、cDNA 的合成、NorthernBlot、DotBlot 等分析。
注意事项
1. 预防RNase污染,应注意以下几方面:
1) 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。
2) 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5MNaOH中浸泡10分钟,用水*冲洗后高压灭菌。
3) 配制溶液应使用RNase-FreeWater。
4) 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
2. 样品应避免反复冻融,否则影响提取DNA和RNA的质量。样品在BufferRL中,可于-70℃保存一个月。
3. BufferRL在使用前请加入β-巯基乙醇,1mlBufferRL加10 μl β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的BufferRL室温可保存1个月。
4. 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明在 BufferRW2、BufferGW1 和 BufferGW2 中加入无水乙醇。
5. 使用前请检查 BufferRL 是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,请于 56℃水浴重新溶解。
6. 所有离心步骤均使用台式离心机,室温下进行。
自备试剂:β-巯基乙醇(新开封或提取 RNA 专用)、70%乙醇(用无 RNase 的水配制)、无水乙醇
操作步骤
1. 材料处理
1a. 贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液(最大提取量为107 个细胞), 收集细胞,弃尽培养液,加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),反复吹打使其充分裂解。
注意:一定要弃尽培养液,否则影响裂解和后续的核酸纯化步骤。
1b. 取不大于30mg的动物组织,液氮研磨成细粉末,加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),或直接加入600μlBufferRL(用前检查是否加入β-巯基乙醇),匀浆处理。
注意:匀浆要充分,否则影响RNA产量。
2. 将上步所得溶液12,000rpm(~13,400×g)离心3-5分钟,小心的将上清加入到已装入收集管(2mlCollectionTube)的吸附柱(SpinColumnDM)中,12,000rpm离心30-60 秒,收集滤液。将吸附柱DM放在一个新的2ml收集管
(2mlCollectionTube)中,室温或4℃放置,待提DNA。
注意:确保吸附柱 DM上没有液体残留,如果有必要可以重复离心,直至所有的液体通过吸附柱DM的膜。总RNA提取
3. 向步骤2所得滤液中加入1倍体积的70%乙醇(无RNase的水配制),混匀。
4. 将上步所得溶液全部加入到已装入收集管(2mlCollectionTube)的吸附柱(SpinColumnRM)中,若一次不能全部加完溶液,可分次转入。12,000rpm离心20秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。
5. 向吸附柱RM中加入700 μlBufferRW1,12,000rpm离心20秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。
6.向吸附柱RM中加入500 μlBufferRW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm离心20秒, 倒掉收集管中的废液,将吸附柱RM重新放回2ml收集管中。
7. 重复步骤6。
8. 12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱RM置于室温数分钟,以*晾干。
注意:此步骤目的是去除吸附柱RM中残余的乙醇,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
9. 将吸附柱RM置于一个新的无RNase1.5ml离心管(CollectionTube1.5ml)中,向吸附柱RM的中间部位加入30-50μlRNase-FreeWater,室温放置2-5分钟,12,000rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。
注意:1)RNase-FreeWate体积不应小于30 μl,体积过小影响回收率。
2)如果要提高RNA的产量,可用30-50 μl新的RNase-FreeWater重复步骤9。
3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤9。
基因组DNA 提取
10. 向吸附柱 DM 中加入 500 μlBufferGW1(使用前检查是否加入无水乙醇),12,000rpm 离心 20 秒,倒掉收集管中的废液,将吸附柱 DM 放回 2ml 收集管中。
11. 向吸附柱DM中加入500 μlBufferGW2(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液,将吸附柱DM放回2ml 收集管中。
12. 12,000rpm离心2分钟,倒掉收集管中的废液。将吸附柱DM置于室温数分钟,以*晾干。
注意:这一步的目的是将吸附柱DM中残余的乙醇去除,乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
13. 将吸附柱DM置于一个新的无RNase1.5ml离心管(CollectionTube1.5ml)中,向吸附柱DM的中间部位加入100 μlBufferGE,室温放置2-5分钟,12,000rpm离心2分钟,收集DNA溶液,-20℃保存DNA。
注意:1)BufferGE的体积不应小于100 μl,体积过小影响回收率。
2)如果要提高DNA的产量,将100 μl新的BufferGE加至吸附柱上,重复步骤13。
3)如果要提高DNA浓度,可以将步骤15所得的DNA洗脱液重新加至吸附柱上,重复步骤13。
附表 1 吸附柱 DM 和吸附柱 RM 的规格说明
规格 吸附柱 DM 吸附柱 RM
最大结合能力 100µgDNA 100µgRNA
最大加样量 700µl 700µl
结合核酸分子量 DNA15–30kb RNA>200 核苷酸
最小洗脱体积 100µl 30µl
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