小鼠视网膜Muller细胞
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小鼠视网膜Muller细胞

参考价: 面议

具体成交价以合同协议为准
2022-04-19 16:53:48
381
属性:
供货周期:现货;规格:5×10⁵Cells/T25培养瓶;货号:GOY-01X1057;应用领域:化工;主要用途:产品仅供科研使用;
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产品属性
供货周期
现货
规格
5×10⁵Cells/T25培养瓶
货号
GOY-01X1057
应用领域
化工
主要用途
产品仅供科研使用
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上海谷研实业有限公司

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产品简介

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定量检测试剂盒
组织3-羟-3-甲戊二酰辅

详细介绍

实验要点及说明:

1.本方法适用于贴壁细胞培养,而不适用于悬浮细胞培养,悬浮细胞可使用滴片法;

2.所使用的盖玻片应该为优质玻璃,并经过铬酸洗液处理;

3.盖玻片非常薄,易碎,取放盖玻片时动作要轻;

4.如果需要更多生长状态一致的细胞,可以使用较大的培养皿,但不宜过大,以避免培养液的浪费和增加污染机率;

5.如果细胞贴壁生长能力较差,可将盖玻片在0.5%多聚赖氨酸溶液中浸泡5-10分钟并自然晾干。

产品属性:  

产品名称

规格

货号

小鼠视网膜Muller细胞

5×10⁵Cells/T25培养瓶

GOY-01X1057

商品介绍:

名称    小鼠视网膜Muller细胞  

2.组织来源:视网膜组织

3.产品规格:5×105cells/T25细胞培养瓶

4.细胞简介:

小鼠视网膜Muller细胞分离自视网膜组织;视网膜居于眼球壁的内层,是一层透明的薄膜。视网膜由色素上皮层和视网膜感觉层组成,两层间在病理情况下可分开,称为视网膜脱离。色素上皮层与脉络膜紧密相连,由色素上皮细胞组成,它们具有支持和营养光感受器细胞、遮光、散热以及再生和修复等作用。组织学上视网膜分为10层,由外向内分别为:色素上皮层、视锥、视杆细胞层、外界膜、外颗粒层、外丛状层、内颗粒层、内丛状层、神经节细胞层、神经纤维层、内界膜。视网膜内层为衬于血管膜内面的一层薄膜,有感光作用;后部鼻侧有一视神经乳头。视网膜上的感觉层是由三个神经元组成。第一神经元是视细胞层,专司感光,它包括锥细胞和杆细胞。视杆细胞主要在离中心凹较远的视网膜上,而视锥细胞则在中心凹处最多。第二层叫双节细胞,约有10到数百个视细胞通过双节细胞与一个神经节细胞相联系,负责联络作用。第三层叫节细胞层,专管传导。视网膜是一层菲薄的但又非常复杂的结构,它贴于眼球的后壁部,传递来自视网膜感受器冲动的神经纤维跨越视网膜表面,经由视神经到达出口。视网膜的分辨力是不均匀的,在黄斑区,其分辨能力*。视网膜Muller细胞作为视网膜中的主要胶质细胞,大约占视网膜胶质细胞的90%,因而在视网膜疾病中起着何种作用也受到越来越多的关注。在超微结构水平上,Muller细胞的胞质似乎比临近的其他细胞更高的电子密度,更发达的内质网,细胞核是典型的卵圆形或多角形。但在不同物种中或同一物种中的不同部位,Muller细胞形态也会有所差异的。视网膜Muller细胞是一种特化的神经胶质细胞,不仅具有维持视网膜的正常结构和功能的作用,并调制视网膜神经元活动,还能参与多种病理过程,尤其是眼底增殖性病变,如增生性玻璃体视网膜病变、增生性糖尿病视网膜病变等,体外培养Muller细胞是研究这些增殖性病变途径之一。

5.方法简介:

实验室分离的小鼠视网膜Muller细胞采用胶原酶消化法和胰蛋白酶反复消化法制备而来,细胞总量约为5×10?cells/瓶。

6.质量检测:

实验室分离的小鼠视网膜Muller细胞经GFAP免疫荧光鉴定,纯度可达90%以上,且不含有HIV-1HBVHCV、支原体、细菌、酵母和真菌等。

7.培养信息:

培养基含FBS、生长添加剂、PenicillinStreptomycin

产品货号CM-M117

换液频率每2-3天换液一次

生长特性贴壁

细胞形态梭形、多角形

传代特性可传3代左右

消化液0.25%胰蛋白酶

培养条件气相:空气,95%CO25%

冷冻保存细胞之方法?

冷冻保存方法一: 冷冻管置于4℃ 30~60 分钟→ (-20 ℃30 分钟*) → -80 ℃16~18 小时(或隔夜) → 液氮槽vaporphase 长期储存。

冷冻保存方法二: 冷冻管置于已设定程序之可程序降温机中每分钟降1-3 ℃ 至–80 ℃ 以下, 再放入液氮槽vapor phase长期储存。*-20 ℃不可超过1 小时, 以防止冰晶过大,造成细胞大量死亡,亦可跳过此步骤直接放入-80℃ 冰箱中,惟存活率稍微降低一些。

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实验报告:

一、分离与培养:

1、无菌条件下,取出1-3d 龄SD大鼠心房组织,然后用PBS将此组织块清洗2次,将成1mm3左右大小;

2、往组织块中加入4 mL酶消化液(0.1% 和0.1% I型胶原酶),混悬10s,置37℃条件下消化10min,之后用滴管吹打制成单细胞悬液,自然沉淀并收集上清,用含10% FBS培养基终止消化后4℃放置;

3、剩下的组织再加入3~4mL酶消化液,混悬10s,置37℃消化10 min后,按上述方法收集上清并终止消化后4℃放置,重复此步骤2-3次,直至组织*被消化;

4、用200目不锈钢筛网过滤细胞消化液,1200r/min 离心10min,弃去上清,沉淀细胞用含有10% FBS DMEM/F12培养基混悬,接种于25cm2培养瓶,放置于37℃ ,5%CO2 培养箱中培养;

5、差速贴壁1h后,吸出培养基,按实验需要接种于6孔板中继续培养;

二、免疫荧光鉴定:

1、待心房肌细胞生长至80%融合时,弃去培养基,用温育的PBS冲洗细胞2次,每次10min,然后用4%多聚甲醛在室温条件下固定细胞15min;

2、PBS冲洗细胞2次,每次10min,然后在4℃条件下,用0.1%Triton X-100透膜15min;

3、PBS冲洗细胞2次,每次10min,然后在室温条件下,用4% BSA封闭细胞30min;

4、按1: 100的比例稀释α-actin一抗,然后将其放在4℃冰箱中孵育细胞过夜;

5、PBS冲洗细胞3次,每次10min,按1:150的比例稀释抗α-actin的二抗, 37℃条件下放置1h;

6、用PBS冲洗3次,每次10min,在倒置荧光显微镜下观察图像并拍照。

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