1. 去除色谱柱内的缓冲液，盐，酸的方法：使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。
   例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 冲洗色谱柱内附着物的方法，基线不稳时的解决方法

• 样本不是蛋白质时，使用甲醇或四氢呋喃冲洗。

• 样品是蛋白质时，使用含0.1% C2HF3O2的50-70%的乙腈/水冲洗

1. 短期（数日）保存：
   使用不含缓冲液，盐，酸的流动相冲洗10-15分钟。保存。
   例：流动相为甲醇/磷酸缓冲液（20mmol/L） =50/50时，就使用甲醇/水 =50/50冲洗

2. 长期（1个月以上）保存：
   使用后，先用不含酸和盐的流动相清洗色谱柱，再将流动相置换为乙腈/水=70/30或 甲醇/水=70/30，保存。

除碱溶液和强酸溶液（pH1.5以下）以外都可以使用。（强碱溶液会使硅胶溶化，强酸溶液会使固定相脱落）
注意点：
溶剂粘度过高会导致压力上升，请将压力控制在20Mpa以下。使用酸性流动相或凝固点高的溶剂后，必须清洗色谱柱。

• 一般情况下缓冲液浓度为0.005~0.02 mol/L即可。

• 流动相在使用前一定要通过0.5μm以下的滤膜过滤。

• 蛋白质反相模式分析时，请使用大孔径色谱柱（孔隙直径300Å) COSMOSIL Protein - R（粒径5μm）。