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-BIA Separations!让病毒纯化更高效
前面 blabla 说了那么多,然而纯化才是本工艺的精华所在。
BIA Separations 的二步纯化工艺的稳健性、连贯性、时效性,均堪称教科书式的经典。
首先纯化的柱子,通过弱阴离子交换,浓缩 pDNA 并去除大部分 HCP、mRNA 和基因组 DNA;
第二步利用疏水相互作用色谱(HIC)的抛光步骤,进一步从超螺旋(SC)治疗级 pDNA 中除去开环(OC)和线性 pDNA 亚型。
两步纯化的作用功能明确、互相合作,大大节省操作步骤和时间。
AEX 色谱柱(CIMmultus™DEAE)浓缩 pDNA,并去除大部分 HCP、mRNA 和基因组 DNA。
在弱阴离子交换柱上捕获质粒 DNA,其中除去剩余的 RNA 和蛋白质,样品结合需要低电导率,通过稀释实现。
随着增加 NaCl 的梯度洗脱,首先洗脱 RNA,然后洗脱质粒 DNA。
层析条件
Monolithic column: | CIMmultus™ DEAE(2 µm)*1 |
phase: | Equilibration buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, pH 7.2 |
Washing buffer A2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.6 M NaCl, pH 7.2 | |
Elution buffer A3: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1 M NaCl, pH 7.2 | |
Working flow rates: | 0.5 – 5 column volume (CV) /min (具体取决于样品特性,使用的层析设备和色谱柱尺寸) |
*1 选择色谱柱体积,取决于需要处理的样品量。
层析方法
1. 用去离子水稀释细菌裂解物至电导率为 35-40mS / cm。稀释取决于样品制备过程中添加的 CaCl2 浓度。
2. 将稀释的样品用 0.45μm 过滤器进行过滤。
3. 将 20CV 的缓冲液 A1 平衡 DEAE 柱。
4. 将澄清的稀释细菌裂解液进行上样。
5. 用 20 CV 的缓冲液 A1 对色谱柱进行流洗。
6. 用 20 CV 的缓冲液 A2 对色谱柱进行流洗。
7. 用 20 CV 的缓冲液 A3(以半工作流速)洗脱并收集 pDNA。
图 1:AEX CIMmultus™DEAE(2μm)柱上的质粒 DNA 洗脱曲线
在高配体密度丁基修饰的(CIMmultus TM C4 HLD)整体柱上,利用疏水相互作用色谱柱(HIC)的抛光步骤,进一步从 超螺旋(SC)治疗级 pDNA 中除去开环(OC)和线性 pDNA 亚型。
为了富集质粒 DNA 的超螺旋亚型,将 DEAE 洗脱液上样到高配体密度丁基柱(C4 HLD)上。
该步骤进一步去除了杂质。
层析条件
phase: | Equilibration buffer B0: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 3 M (NH4)2SO4, pH 7.2 |
Washing buffer B1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 1.7 M (NH4)2SO4, pH 7.2 | |
Adjustment buffer: 4 M (NH4)2SO4 | |
Elution buffer B2: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, 0.4 M (NH4)2SO4 , pH 7.2 | |
Regeneration buffer A1: 50 mM Tris, 10 mM EDTA, pH 7.2 | |
Working flow rates: | 0.5 – 5 CV/min (具体取决于样品特性、使用的层析设备和色谱柱尺寸) |
*2 选择色谱柱体积,取决于需要处理的样品量。
层析方法
1. 调节来自 DEAE 柱的含 pDNA 洗脱液,每 1 体积(V)洗脱液加入 3 体积(V)的 4M(NH4)2SO4。
2. 用 20CV 的缓冲液 B0 来平衡 C4 HLD 柱。
3. 将 DEAE 柱洗脱的 pDNA 组份上样。
4. 用 20 CV 的缓冲液 B1 流洗色谱柱。
5. 用缓冲液 B2(以半工作流速)洗脱并收集 pDNA。
6. 用 30 CV 的缓冲液 A1 再生色谱柱。
7. 加样 3 次后,对柱子进行清洗。
图 2:在 HIC CIMmultus TM C4 HLD(2μm)柱上分离超螺旋质粒 DNA
· 从 C4 HLD 柱洗脱的超螺旋 pDNA 组份含有硫酸铵,必须在生物应用质粒之前将其除去。
· 缓冲液交换可通过透析滤过或体积排除色谱等方法进行。
· 配置和填充可能需要额外的处理。
二步法层析过程分析:
质粒 DNA 制造成功的关键是实时过程控制方法,确保最终产品中高百分比的超螺旋 pDNA。
CIMac™pDNA 分析柱可用于监测降解产物(开环和线性 pDNA),去除杂质(RNA),并确保每个生产步骤都能产生预期的超螺旋 pDNA 量。
CIMac™pDNA 分析柱还用于超螺旋质粒 DNA 含量的质量控制。
图 3:使用 CIMac™pDNA-0.3 分析柱的质粒 DNA 亚型含量的质量控制
结果和结论:
通过优化裂解、沉淀和两种色谱步骤相结合,可生产满足所有监管要求的纯 pDNA。
可以完成去除 99% 以上的主要杂质(RNA,基因组 DNA,宿主细胞蛋白,内毒素和开环 pDNA)。
此外,快速(大肠杆菌的 pDNA 提取和纯化可在几小时内完成),可重复的过程可降低运营成本并提高工厂生产率。
*的整体特性有助于该过程的直接可扩展性,涵盖从小规模实验室到大规模工业纯化 pDNA 的生产水平。
Table 1: Process results.
Process yield | > 80 % |
A260/280 | 1.92 |
Homogeneity (SC pDNA) | > 97 % |
HCD – removed | > 99.5 % |
HCP - removed | > 99 % |
Endotoxin | < 2 EU/mg pDNA |
RNA - removed | > 99 % |
点评
目前市面上有不少质粒纯化工艺方案,但是比较下来,BIA 二步法纯化工艺具有两大优势:
效率明显提高
只需两步色谱和高流速的整体柱色谱方案,减少工艺步骤(提高回收率)并加快纯化速度,从而显著提高生产率。
灵活放大
由于特定的整体柱设计,质粒 DNA 过程可以快速扩展到更大的单位。
在 1 毫升色谱柱上设计的工艺可以轻松转移到试验和生产规模。
在 8L 色谱柱上单次运行可以产生 48 g 药物级 scDNA。
Table 2: Scale up options.
Column size | pDNA purified per cycle |
1 mL | 6 mg |
8 mL | 48 mg |
80 mL | 480 mg |
800 ml | 4.8 g |
8000 mL | 48 g |
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