用于原核表达系统的自诱导培养基，该培养基能高效诱导表达外源蛋白。培养基中同时加入葡萄糖和乳糖，大肠杆菌会优先利用葡萄糖，在葡萄糖耗尽前不会诱发Iac启动子；当葡萄糖耗尽时，乳糖发挥作用，开启Iac启动子诱导外源蛋白表达，而乳糖的代谢产物也同时作为细菌生长的碳源。自诱导的方法省去了监测培养基的菌密度和添加IPTG诱导蛋白表达的步骤，一方面使得实验操作更加简洁，另一方面避免了IPTG对细菌的毒害作用。

自诱导培养基(lac启动子)(Auto-induction Medium)产品及特点
本产品是在pET专用生长培养基的基础上开发而成的,它利用E.coli自身对培养 基中碳源和能源的调控利用机制,实现外源蛋白在细菌达到饱和期后的自动诱发。
具有下列特点:
1. 不需添加任何IPTG或相关诱导物,节约成本。
2. 免去了密切监控菌液密度的过程,尤其适合大规模筛选 。
3. 细菌生长密度远高于IPTG诱导表达系统 。
4. 外源蛋白表达量远远高于IPTG诱导表达系统。
5. 本产品即开即用,操作简单 。
6. 与各种细胞培养容器兼容(如培养瓶、培养罐、深孔管、发酵罐等)。
自诱导培养基(lac启动子)(Auto-induction Medium)使用及效果
用本产品以及LB+IPTG诱导培养细菌获得的外源蛋白表达量比较

自诱导培养基(lac启动子)(Auto-induction Medium)操作步骤

(一)获得目的基因

1、通过PCR方法:以含目的基因的克隆质粒为模板,按基因序列设计一对引物(在上游和下游引物分别引入不同的酶切位点),PCR循环获得所需基因片段。

2、通过RT-PCR方法:用TRIzol法从细胞或组织中提取总RNA,以mRNA为模板,逆转录形成cDNA第一链,以逆转录产物为模板进行PCR循环获得产物。

(二)构建重组表达载体

1、自诱导培养基(lac启动子)(Auto-induction Medium)载体酶切:将表达质粒用限制性内切酶(同引物的酶切位点)进行双酶切,酶切产物行琼脂糖电泳后,用胶回收Kit或冻融法回收载体大片段。

2、PCR产物双酶切后回收,在T4DNA连接酶作用下连接入载体。

(三)  获得含重组表达质粒的表达菌种

1、 将连接产物转化大肠杆菌DH5α,根据重组载体的标志(抗Amp或蓝白斑)作筛选,挑取单斑,碱裂解法小量抽提质粒,双酶切初步鉴定。

2、 测序验证目的基因的插入方向及阅读框架均正确,进入下步操作。否则应筛选更多克隆,重复亚克隆或亚克隆至不同酶切位点。

3、 以此重组质粒DNA转化表达宿主菌的感受态细胞。

(四)诱导表达

1、 自诱导培养基(lac启动子)(Auto-induction Medium)挑取含重组质粒的菌体单斑至2ml LB(含Amp50μg/ml)中37℃过夜培养。

2、按1∶50比例稀释过夜菌,一般将1ml菌加入到含50mlLB培养基的300ml培养瓶中, 37℃震荡培养至OD600≌0.4-1.0(*0.6,大约需3hr)。

3、取部分液体作为未诱导的对照组,余下的加入IPTG诱导剂至终浓度0.4mM作为实验组,两组继续37℃震荡培养3hr。

4、分别取菌体1ml, 离心12000g×30s收获沉淀,用100μl 1%SDS重悬,混匀, 70℃10min。

5、离心12000g×1min,取上清作为样品,可做SDS-PAGE等分析。