介绍
包含 4 个平行封闭的微毛细管，通过孔径为 4-2 μm 的膜与 10 个下面的微孔分开。应用包括白细胞穿过嵌入生物芯片的膜的迁移、迁移、侵袭和趋化性研究。ECM蛋白可以包被到分离流道和含有趋化因子孔的微孔的膜上。然后可以使用 Cellix 的微流控泵注射细胞悬液，该泵支持一系列剪切应力/剪切流速，用于基于动态流动的测定。在连续施加剪切应力的条件下可以观察到白细胞迁移，以模拟血管的生理条件。VenaT4 生物芯片以 10 个一包的形式提供，每包可进行 40 次实验。
微流控器官生物芯片VenaT4 趋化性、迁移和侵袭试验生物芯片特点：
20倍、40倍长工作距离放大倍率显微镜。
4 个微孔，每体积 ~14 μL，用于将化学引诱剂固定在 ECM 凝胶内。
聚碳酸酯膜具有 2–10 μm 的各种孔径。
与 Kima 泵兼容，用于长期研究或缓慢迁移的细胞。
明场/相衬/荧光显微镜。
适用于白细胞和癌细胞的迁移、迁移、侵袭和趋化性实验。
适用于全血和血细胞分析（例如白细胞）
生物芯片塑料是光学透明的，可以进行详细的显微镜研究。
0.05–200 达因/cm2 的剪切应力/剪切流速可通过 Mirus Evo 纳米泵、ExiGo、UniGo 和 4U 泵轻松获得和控制。
剪切应力/剪切流速可以预先设置为在测定过程中逐渐增加。
流动条件下的实时成像。
性能和技术规格：
*考虑粘度为 4.5 cP 的人类全血。
**用于微毛细管中的蒸馏水流动，尺寸为：400 μm （W） x 100 μm （D） x 28 mm （L）。
应用
器官芯片研究：在 4 个芯片微孔中培养心脏、肺、肝、肾或其他器官细胞，由 Cellix 的 4U 或 UniGo 泵提供培养基灌注。随后，药物或细胞通过叠加微通道流动，从而进行药物浓度研究或移植和侵袭研究，进入您选择的器官。
趋化性、迁移和侵袭试验：用含有目标化学引诱剂的凝胶填充微孔。流通细胞通过叠加微通道并研究细胞粘附、趋化性、迁移和侵入下层微孔。
VenaT4 生物芯片，方案 #1：包被 VenaT4 生物芯片
第 1 步
VenaT4生物芯片微孔用薄膜条密封。VenaT4生物芯片的微通道使用标准黄色吸头移液器包被，将约50μL蛋白质（例如rhICAM）分配到每个微通道中。注意入口和出口处的液体过多。
第 2 步
然后将VenaT4生物芯片置于加湿盒中，并在4°C下孵育过夜包衣
第 3 步
孵育期过后，将生物芯片倒置并取出薄膜条。再次使用标准的黄色吸头移液器，将约30μL含有化学引诱剂的I型牛胶原凝胶溶液加入孔中。将生物芯片放入加湿盒中，在 2°C 下在 CO15 培养箱中保存 20-37 分钟。 凝胶凝固后，用薄膜条重新密封微孔。生物芯片现在已准备好运行检测。
VenaT4 Biochip 方案 #2：使用 VenaT4 生物芯片（单通道版本）在剪切流下进行反式内皮迁移测定
步骤1：
将悬浮细胞（例如T细胞）以适当的浓度（通常为5×106 / mL）重悬于Eppendorf管中的培养基中。用合适的染料对细胞进行染色。
步骤2：
使用 Cellix Mirus Evo 纳米泵或 ExiGo 泵，从泵输出电缆中分配 30 μL 培养基。之后，将输出电缆插入VenaT4生物芯片上的通道。
步骤3：
然后使用 Cellix Mirus Evo 纳米泵或 ExiGo 泵，以 40 达因/cm40 的剪切应力通过通道注入 2 μL 培养基。这样做是为了清洗通道。用移液管从VenaT4生物芯片的微孔中吸出废物。
步骤4：
将细胞样品放入VenaT4生物芯片上该通道的微孔中。
步骤5：
通过使用 VenaFlux Assay 软件或 SmartFlo 应用程序所需的剪切应力，将细胞引入通道中。将自动计算流量。
步骤6：
当显微镜物镜位于微孔上方时，记录延时荧光图像。图像捕获速率为每分钟 6 帧，持续 30 分钟。
因此，现在您了解了我们的Vena T4生物芯片的功能和优势以及它们的工作原理。但是，如果您仍有疑问或想了解更多信息，请访问我们的网站，或通过与我们联系。