需氧培养法学会了，厌氧培养法还难么？

(一)高层琼脂柱法

此法很简单，只需把含有1%葡萄糖的琼脂培养基装至试管的三分之二高度，冷却凝固后，用接种针穿刺接种至琼脂底部，培养后厌氧菌在底部生长，越接近表面越差。也可在灭菌后冷却至45 ℃左右的琼脂中，直接用无菌吸管加入适量的菌悬液，然后迅速用两手搓转式管使之混匀，再放入冷水中使之凝固。培养后厌氧菌会在管的深处出现。

(二)黄磷法

在能密封的玻璃容器的底部放少量的水和一块搁板，培养皿或试管接种完后用纸包好放于搁板上。在容器的上部放一个无菌培养皿，把碳酸钙和黄磷放于皿中，用烧红的接种针引燃黄磷后，立即封闭容器。黄磷燃烧消耗掉容器中的氧，形成无氧环境。生成的氧化磷可被水吸收， 1L的容积需用1 g黄磷。

(三)厌氧罐法

1.厌氧罐体的结构

目前使用的厌氧罐的罐体采用透明聚碳酸酯硬质塑料或不锈钢制成。圆形罐盖的周边凹槽内嵌有橡皮圈，能使罐体和盖密封。罐体与罐盖之间有一个大的金属螺旋夹，可使罐体密闭。罐体内盖的正中下方，有个金属丝网盒或金属盘，用于放催化剂。

2.厌氧罐的原理

原理是用物理或化学的方法把密闭容器中的氧除去，制造一个无氧环境。常用的方法是油气换气法和气体发生袋法。

抽气换气法：先把需厌氧培养的平板或液体瓶放入真空厌氧缸或厌氧罐中，再放入钯粒催化剂(可使罐中的氧与氢反应生成水，除去氧)和美蓝指示剂(缸中有氧时，指示剂为蓝色，缸中无氧时，指示剂变无色),然后利用真空泵对真空厌氧缸或厌氧罐抽真空，再反复充入无氧的氮气3次，后充入80%的氮气、10%的氢气和10%二氧化碳的混合气体。钯粒能够促使混合气体中氧反应掉，美蓝指示剂显示无色，则厌氧环境形成。钯粒催化剂用过后，经干热2h后可重复使用。打开观察培养物后需重新抽气换气。

 该法的特点是只利用化学方法造成无氧环境，简便易行。该方法是在厌氧罐中放一个氢气、二氧化碳气体发生袋、催化剂、美蓝指示剂。在钯粒催化剂的作用下，罐中的氧气和氢气反应生成水，从而造成罐内的无氧环境。气体发生袋是由一丸氯化钴合剂、一丸碳酸氢钠柠檬酸合剂及一片滤纸条组成。使用时剪去部分的一角，加入10 mL水，水沿滤纸渗到两个试剂丸上，发生反应，产生氢气和二氧化碳。

使用时，加水后应立即放入罐中并密闭，即可厌氧培养。

(四)厌氧袋法

厌氧袋是一种无毒、透明不透气的复合塑料薄膜袋。袋中装有产生氢气和二氧化碳的安剖瓶1只，已还原成无色的美蓝指示剂安剖瓶1只和钯催化剂。使用时，把需培养的平皿放入厌氧袋中，用弹簧夹夹紧袋口，呈密闭状态，先折断气体发生安瓿瓶，反应结束后(0.5 h左右),再折断美蓝指示剂安瓿瓶，若指示剂不显色，则可进行培养。

现在，出现了一种更为方便的厌氧药剂袋，只需把药剂(产气袋)外包装剪开放入袋(盒或罐)内(见下图),密封后即可形成适宜的厌氧环境。药剂袋分厌氧培养、微需氧培养和嗜二氧化碳培养三种类型。*厌氧可同时放置指示剂。此法操作更加简便，不用加水、不用催化剂。厌氧产气袋反应30 min后氧气浓度降为0;微需氧产气袋反应后达到氧气浓度8%-9% ,二氧化碳浓度7%~8%;二氧化碳产气袋反应后达到氧气浓度15%左右，二氧化碳浓度6%左右。

(五)培养箱法

对高度厌氧菌的培养，用上面的介绍方法难以达到要求，需使用专门的厌氧培养箱。厌氧培养箱内充满氮气、氢气、二氧化碳的混合气体，通过箱上带的橡胶手套，可以使所有的操作都能在箱内进行。

(六)氧化酶法和氧化酶平板法

氧化酶法是在氧化酶平皿中，先将0. 1 ml.的氧化酶加入到5mL的肉汁培养基中，再倒入厌氧培养基混合，当培养基处于融化状态时即加入厌氧菌。因皿盖内有一个内环，它与平板表面形成一个牢固的密封环境，氧化酶可还原培养基中琼脂表面和盖子之间的空间氧。

氧化酶平板法是先在氧化酶平皿中放入传统的厌氧培养基和少量的氧化酶制剂制成平板，使用时，直接进行划线接种，在有氧的条件下培养即可。

(七)焦性没食子酸法

1. Wright管法

Wright管法(见图4-2)可用于严格的厌氧菌培养。原理是焦性没食子酸与氢氧化钠溶液反应，吸收斜面与棉塞间的氧气。方法是在Wright管的斜面上划线接种厌氧菌后，将培养管口的棉塞修剪后用玻璃棒推入管内，使它刚好在斜面的上方，再在棉塞的上方和管口空间内填焦性没食子酸结晶，再加入1 ml 10%氢氧化钠溶液，后在管口塞上橡皮塞，立即倒置，放于培养箱中培养。

2. Buchner管法

Buchner管是一个厚壁的玻璃管，它的下端变细，使装入的试管不能到达底部，管口有橡皮塞可使管密封 培养时先在管的底部加入少许的焦性没食子酸，然后加入氢氧化钠溶液和接种好的试管，立即用橡皮塞封住管口，再放入培养箱培养即可。焦性没食子酸和氢氧化钠的用量是100 mL的容积用1 g焦性没食子酸和5 mL 20%氢氧化钠溶液。

3.干燥器法

真空干燥器的构造如图4-3,在隔板下放一个培养皿底盖，盖中加入5 ml. 10%氢氧化钠(或2. 5 ml. 20%氢氧化钠或50%过饱和氢氧化钠),在盖上方放置一块载玻片，玻片上放0.5 mg焦性没食子酸。把需要培养的试管(或培养皿)和一瓶美蓝试剂放在隔板上，然后盖上干燥器的盖子(边缘涂抹少量的凡士林)上，密封好。稍微倾斜干燥器，使焦性没食子酸与氢氧化钠混合，吸收氧气，同时打开与干燥器连接的真空泵，抽出干燥器中的空气，即可放培养箱中培养。

(八)除氧法Hungate厌氧技术

Hungate厌氧技术是美国微生物学家R. E. Hungate于1950年发明的一套用于厌氧菌分离和培养的严格的厌氧技术，它包括培养基预还原和在无氧环境中进行的菌株分离和培养操作技术。除氧法Hungate厌氧技术的原理是利用除氧铜柱制备高纯氮，来驱除小环境中的空气，使整个操作过程从培养基的配制、分装、灭菌，以及菌悬液的稀释、接种、培养、分离、移种至保蔽笙却外干高度无氧的条件进行，从而保证严格厌氧菌的存活和生长。

1.铜柱除氧系统的原理

铜柱是由内部装有铜丝或铜屑的硬质玻璃管构成，长约40 mm ~400 mm,两段被加工成漏斗状，外壁绕有加热层，通过与变压器相连来控制电压和稳定铜柱的温度。铜柱两端用胶管一端连接气钢瓶，一端连接出气管口。当从气钢瓶出来的气体如氮气、二氧化碳和氢气等含有微量氧气时，这些气体通过温度约360 ℃的铜柱时，铜和气体中的微量氧气化合生成氧化铜，而氧化铜又被还原成了铜，铜柱则又呈现明亮的黄色。此铜柱可以反复使用，并不断起到除氧的目的。

2.预还原培养基及稀释液的制备

先将配制好的培养基和稀释液煮沸驱除氧气，而后用半定量加样器趁热分装到螺口厌氧试管中，一般琼脂培养基装4.5 mlL ~5 mL,稀释液装9 ml,同时插入通氮气的长针头以排除氧气，直至培养基内加入的氧化还原指示剂-刃天青由蓝到红后变成无色，证明试管内氧气已被*去除，再盖上螺口的丁烯胶塞及螺盖，灭菌。

3.样品不同稀释度的制备

在无菌条件下准确称取1g固体或用无菌注射器吸取1 mL混合均匀的液体样品，而后加入按此操作方法依次进行10倍系列稀释，制成不同浓度的样品稀释液。选适宜的三个稀释度进行试管培养计数。

4.厌氧滚管培养法

将盛有无氧无菌琼脂培养基的试管加热至100 ℃，使琼脂熔化，并保温在50 ℃左右的水浴中，备用。用无菌注射器取至少3个稀释度的样品稀释液0.1 mL,加入盛有融化的预培养基在试管内壁立即凝固成一薄层。适温培养后，在琼脂层内或表面形成肉眼看见的菌落。移种挑取单菌落时，将带有单菌落的试管和需接种的盛有无菌、厌氧培养液的试管固定在适当的支架上，去掉试管的胶塞，同时插入用火焰灭过菌的注射器氮气长针头，通入气流速度适当的、无菌的高纯氮气。将挑菌落的无菌弯头毛细管的粗口端接一约60 cm长的乳胶

管，小心插入形成单菌落的试管内，用嘴咬住胶管的另一端，轻轻吸取待取的单菌落，转移至盛有厌氧培养液的试管内，塞上胶塞，拧紧螺口胶木盖，适温培养。

5.活菌（分离）计数

选择分散均匀，数量在几十至几百个菌落的厌氧试管进行活菌计数，即可得出每克或每毫升样品中含有的厌氧菌的数量。

6.计算

活菌数量CFU/g( mL)样品=0. 1 ml滚管计数的实际平均值x 10 x稀释倍数。