在流体环境下细胞培养进行粘附实验,该应用描述了一种在流动下的粘附试验，该试验旨在研究特定细胞表面分子的作用，以确定它们在细胞附着和粘附到其他细胞类型期间的潜在相互作用。
实验流程
1.准备EOMA细胞稀释液：根据制造商的说明，使用非酶细胞解离溶液分离先前培养的EOMA细胞。使用血细胞计数器（Neubauerchamber）对细胞进行计数。在EC培养基中将细胞稀释至1.2x106个细胞/ml的浓度。
2.种入EOMA细胞：在3个 µ-SlidesI0.6mmLuer（ibidi，80186）中加入150µlEOMA细胞稀释液（每个µ-Slide1.75x105EOMA细胞），然后孵育3小时。
表1：实验设置
3.启动流量：播种三小时后，将2个µ-Slides连接到流体单元FU，使用总量2.7毫升EC培养基。在8.2mbar的压力下将EOMA细胞表面的剪切应力设置为0.5dyn/cm²。测量流速并使用两个FU的平均值来计算校准因子。提前孵育FU和连接的载玻片过夜。第三个带有EOMA细胞的µ-Slide用作静态控制。在没有任何流动的情况下孵育它过夜。
4.准备MM细胞：根据制造商的方案，用CellTrackerGreen(CMFDA)染料在600µlRPMI培养基（不含FCS）中染色6x105MM细胞。标记后，离心细胞并使用血细胞计数器对其进行计数。
5.开始与MM细胞共培养：停止流动并在无菌条件下从FU水库中取出EC培养基。要开始共培养，将RPMI培养基（含10%FCS）和EC培养基以1:1的比例混合，并填充该混合物总体积为2.5ml，其中含有1.5x105MM注入两个FU储液罐。将FU重新连接到泵系统并继续流动24小时。
6.分子阻断：将MM细胞添加到ECs后24小时，用100µg/ml抗体（载玻片 #2）或相应的同种型对照（载玻片 #1）处理细胞，将它们直接添加到FU，无需更换介质。将孵育保持在流动状态下24小时。
7.清洗和成像：从FU上断开µ-Slides。用PBS清洗细胞一次，以去除任何非贴壁细胞。使用共聚焦显微镜获取荧光图像，以可视化附着在EC层上的标记MM细胞。
图1：与同种型对照处理（左图）相比，阻断特定表面分子（右图）时，MM细胞对ECs的粘附性降低
