中华人民共和国国家标准
GB/T 43714-2024
饲料中泰拉霉素的测定 液相色谱-串联质谱法
Determination of tulathromycin in feeds-
Liquid chromatography-tandem mass spectrometry
前言
本文件按照GB/T1.1-2020《标准化工作导则第1部分：标准化文件的结构和起草规则》的规定起草。
请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。
本文件由全国饲料工业标准化技术委员会（SAC/TC 76）提出并归口。
本文件起草单位：浙江正明检测有限公司、宁波市农产品质量检测中心。
本文件主要起草人：吴银良、付岩、徐峰、朱勇、马艳、应永飞、王全胜、吴市学、黄玲、史西志。
1范围
本文件描述了饲料中泰拉霉素的液相色谱-串联质谱测定方法。
本文件适用于配合饲料、浓缩饲料、精料补充料和添加剂预混合饲料中泰拉霉素的测定。
本文件的检出限为10.0μg/kg，定量限为20.0μg/kg。
2规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中，注日期的引用文件，仅该日期对应的版本适用于本文件；不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。
GB/T 6682分析实验室用水规格和试验方法
GB/T 20195动物饲料试样的制备
3术语和定义
本文件没有需要界定的术语和定义。
4原理
试样中的泰拉霉素（泰拉霉素A和泰拉霉素B）用甲酸甲醇溶液提取，经固相萃取柱净化后，用液相色谱-串联质谱仪测定，泰拉霉素A和泰拉霉素B响应一致。以泰拉霉素A为标准品，基质匹配标准溶液校准，外标法定量。
5试剂或材料
除非另有规定.仅使用分析纯试剂。
5.1 水：GB/T 6682，一级。
5.2甲酸：色谱纯。
5.3甲醇：色谱纯。
5.4乙腈：色谱纯。
5.5甲酸甲醇溶液（0.25%，体积分数）：移取2.5 mL甲酸（5.2），用甲醇（5.3）稀释至1 000 mL，混匀。
5.6 甲酸溶液（0.1%，体积分数）：移取1 mL甲酸（5.2），用水稀释至1 000 mL，混匀。
5.7 甲醇甲酸溶液：移取90 mL 0.1%甲酸溶液（5.6）和10 mL甲醇（5，3），混匀。
5.8标准储备溶液（1 mg/mL）：称取泰拉霉素A（CAS：217500-96-4，纯度不低于97.0%）10 mg（精确至0.01 mg）于10 mL，容量瓶中，用甲醇（5.3）溶解并定容，混匀。-18℃以下保存，有效期6个月。
5.9标准中间溶液（10μg/mL）：准确移取1 mL标准储备溶液（5.8）于100 mL容量瓶中，用甲醇（5.3） 稀释定容，混匀。-18℃以下保存，有效期2个月。
5.10标准系列溶液：准确移取适量标准中间溶液（5.9）于容量瓶中，分别用甲醇甲酸溶液（5.7）稀释定容，混匀，配制成质量浓度分别为0.5 ng/mL、1 ng/mL、2.5 ngmL、10 ng/mL、25 ng/mL、和50 ng/mL的标准系列溶液。临用现配。
5.11增强型脂肪去除固相萃取柱：300mg/3mL，或相当者。
5.12 微孔滤膜：0.22 μm，有机系。
6仪器设备
6.1 液相色谱-串联质谱仪：配电喷雾离子源。
6.2 分析天平：精度为0.01 mg和0.01g。
6.3 离心机：转速不低于9 000 r/min。
6.4 振荡器：转速不低于300 r/min。
6.5 涡旋混合仪。
6.6固相萃取装置。
6.7 氮吹仪。
7样品
按GB/T20195制备样品，至少200g粉碎使其全部通过0.425mm孔径的试验筛，充分混匀，装入磨口瓶中，备用。选取类型相同、均匀一致，且在待测物保留时间处，仪器响应值小于方法定量限30%的饲料样品，作为空白样品。
8试验步骤
8.1 提取
平行做2份试验。称取试样2.5g（精确至0.01g）于50mL离心管中，准确加入20mL甲酸甲醇溶液（5.5），300 r/min振荡提取15 min，9 000 r/min离心3 min，移取上清液于另一离心管中。重复提取1次，合并上清液，混匀，备用。
8.2 净化
准确移取2 mL备用液（8.1）过固相萃取柱（5.11），用1 mL甲醇（5.3）洗脱，收集过柱液和洗脱液于50℃氮气吹干，准确加入2mL甲醇-甲酸溶液（5.7）溶解残渣，涡旋混匀，微孔滤膜（5.12）过滤，待测。
8.3基质匹配标准系列溶液的制备
称取空白试样，按照8.1和8.2操作至“50℃氮气吹干”后，分别准确移取2 mL标准系列溶液（5.10）溶解残渣，配制成质量浓度分别为0.5 ng/mL、1 ng/mL、2.5 ng/mL、10 ng/mL、25 ng/mL和50ng/mL的基质匹配标准系列溶液。临用现配。
8.4 测定
8.4.1 液相色谱参考条件
a）色谱柱：C18柱，柱长50 mm，内径2.1 mm，粒度1.7μm，或性能相当者；
b）柱温：35℃；
c）进样量：5μL；
d）流速：0.3 mL/min；
e）流动相：A相为甲酸溶液（5.6），B相为甲醇（5.3），梯度洗脱程序见表1。
8.4.2 质谱参考条件
质谱参考条件如下：
a）电离方式：电喷雾电离，正离子模式（ESI+）；
b）检测方式：多反应监测（MRM）；
c）毛细管电压：3.0 kV；
d）离子源温度：150 C；
e）脱溶剂温度：500℃；
f）脱溶剂气：氮气1 000 L/h。
多反应监测（MRM）离子对、锥孔电压及碰撞能量见表2。
8.4.3基质匹配标准系列溶液和试样溶液测定
在仪器的最佳条件下，分别取基质匹配标准系列溶液（8.3）和试样溶液（8.2）上机测定。基质匹配标准溶液的定量离子对色谱图见附录A。
8.4.4定性
在相同试验条件下，试样溶液与基质匹配标准系列溶液中泰拉霉素A的保留时间一致，其相对偏差在±2.5%之内。根据表2选择的定性离子对，比较试样谱图中泰拉霉素A定性离子对的相对离子丰度与质量浓度接近的基质匹配标准溶液中对应的定性离子对的相对离子丰度，若偏差不超过表3规定的范围，则可判定为样品中存在泰拉霉素。
8.4.5定量
以基质匹配标准溶液中泰拉霉素A质量浓度为横坐标、定量离子对色谱峰面积为纵坐标，绘制标准曲线，其相关系数应不低于0.99。试样溶液中泰拉霉素与基质匹配标准溶液中泰拉霉素A的响应值均应在仪器检测的线性范围内.如超出线性范围，应重新测定。单点校准定量时，试样溶液中泰拉霉素质量浓度与基质匹配标准溶液质量浓度相差不超过30%。
9试验数据处理
试样中泰拉霉素的含量以质量分数ω计，数值以微克每千克（μg/kg）表示。多点校准按公式（1）计算；单点校准按公式（2）计算：
式中：
ρ——由基质匹配标准曲线得到的试样溶液中泰拉霉素A的质量浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
V1——提取后提取液总体积，单位为毫升（mL）；
V3——试样的最终定容体积，单位为毫升（mL）；
V2——净化用试样提取液体积，单位为亳升（ml）；
m——试样质量，单位为克（g）；
1 000——换算系数。
式中：
A——试样溶液中泰拉霉素的峰面积；.
As——基质匹配标准溶液中泰拉霉素A的峰面积；
ρs——基质匹配标准溶液中泰拉霉素A的质量浓度，单位为纳克每毫升（ng/mL）；
V1——提取后提取液总体积，单位为毫升（mL）；
V3——试样的最终定容体积.单位为毫升（mL）；
V2——净化用试样提取液体积，单位为毫升（mL）；
m——试样质量，单位为克（g）；
1 000——换算系数。
测定结果以平行测定的算术平均值表示，保留3位有效数字。
10 精密度
在重复性条件下，2次独立测定结果与其算术平均值的绝对差值不大于该算术平均值的15%。
