Na+K+- ATP 酶活性检测试剂盒（可见分光光度法）
产品货号：BA1037
产品规格：50管/24样
产品内容：
试剂一：液体30mL×1瓶，4℃保存。
试剂二：液体4mL×1瓶，4℃保存。
试剂三：粉剂×2支，-20℃保存。临用前用1mL蒸馏水溶解，现用现配。用不完的试剂-20℃可保存一周。
试剂四：液体2mL×1瓶，4℃保存。
试剂五：粉剂×1瓶，4℃保存。用时加入3mL双蒸水， 4℃保存。
试剂六：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水，溶解后4℃保存一周。
试剂七：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水，溶解后4℃保存一周。
试剂八：液体15mL×1瓶，室温保存。
标准品：10μmol/mL标准磷贮备液1mL×1支，4℃保存。
0.5μmol/mL 标准磷应用液配制：将标准品20倍稀释，即取0.1mL标准品加1.9mL蒸馏水充分混匀。
定磷剂的配制：按H2O:试剂六:试剂七:试剂八=2:1:1:1的比例配制，配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效，若是蓝色则为磷污染，定磷剂现用现配。
注意：配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。
产品说明：
Na+K+- ATP 酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中，可催化ATP水解生成ADP和无机磷。
Na+K+-ATP 酶分解ATP生成ADP及无机磷，通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
操作步骤：
一、样品酶液的制备：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照每500万细菌或细胞加入1mL试剂一，超声波破碎细菌或细胞（功率20％，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：称取约0.1g组织，加入1mL试剂一进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
二、测定步骤
1、可见分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至660nm，蒸馏水调零。
2、酶促反应（在EP管中加入下列试剂）
对照管 | 测定管 | |
试剂一（μL） | 130 | 90 |
试剂二（μL） | 80 | 80 |
试剂三（μL） | 40 | 40 |
试剂四（μL） | 40 | |
样品（μL） | 200 | |
混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）准确水浴10min | ||
试剂五（μL） | 50 | 50 |
样品（μL） | 200 | |
混匀，4000g，常温离心10min，取上清液 | ||
3 定磷
空白管 | 标准管 | 对照管 | 测定管 | |
0.5μmol/ml标准磷应用液（μL） | 100 | |||
上清液（μL） | 100 | 100 | ||
蒸馏水（μL） | 100 | |||
定磷试剂（μL） | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
混匀，40℃水浴10min，在660nm处，记录各管吸光值。 | ||||
三、计算
1、血清（浆）Na+K+-ATPase活力的计算：
定义：规定每小时每毫升血清（浆）中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力（U/mL）= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷V样÷T
=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）
2、组织、细菌或细胞中Na+K+- ATPase活力的计算：
（1）按蛋白浓度计算：
定义：规定每小时每毫克组织蛋白中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/mg prot)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷（Cpr×V样）÷T =7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷Cpr
（2）按样本鲜重计算：
定义：规定每小时每克组织中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/g鲜重)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷(V样÷V样总×W)÷T=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
定义：规定每小时每1万个细菌或细胞中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/104)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷(V样÷V样总×500)÷T=0.015×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）
C标准管：标准管浓度，0.5μmol/mL；V总：酶促反应总体积，0.5mL；V样：加入样本体积，0.2mL ；V样总：加入试剂一体积，1mL；T：反应时间，1/6小时；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g；500：细菌或细胞总数，500万。
注意事项：
1、由于每一个样都必须做对照，本试剂盒50管保证测24份Na+K+-ATP酶。
2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。
3、空白管和标准管各只要做一管。
Na+K+- ATP 酶活性检测试剂盒（可见分光光度法）
产品货号：BA1037
产品规格：50管/24样
产品内容：
试剂一：液体30mL×1瓶，4℃保存。
试剂二：液体4mL×1瓶，4℃保存。
试剂三：粉剂×2支，-20℃保存。临用前用1mL蒸馏水溶解，现用现配。用不完的试剂-20℃可保存一周。
试剂四：液体2mL×1瓶，4℃保存。
试剂五：粉剂×1瓶，4℃保存。用时加入3mL双蒸水， 4℃保存。
试剂六：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水，溶解后4℃保存一周。
试剂七：粉剂×1瓶, 4℃保存。用时加入15mL双蒸水，溶解后4℃保存一周。
试剂八：液体15mL×1瓶，室温保存。
标准品：10μmol/mL标准磷贮备液1mL×1支，4℃保存。
0.5μmol/mL 标准磷应用液配制：将标准品20倍稀释，即取0.1mL标准品加1.9mL蒸馏水充分混匀。
定磷剂的配制：按H2O:试剂六:试剂七:试剂八=2:1:1:1的比例配制，配好的定磷剂应为浅黄色。若无色则试剂失效，若是蓝色则为磷污染，定磷剂现用现配。
注意：配试剂最好用新的烧杯、玻璃棒和玻璃移液器，也可以用一次性塑料器皿，避免磷污染。
产品说明：
Na+K+- ATP 酶广泛分布于植物、动物、微生物和细胞中，可催化ATP水解生成ADP和无机磷。
Na+K+-ATP 酶分解ATP生成ADP及无机磷，通过测定无机磷的量来确定ATP酶活性。
需自备的仪器和用品：
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
操作步骤：
一、样品酶液的制备：
1、细菌、细胞或组织样品的制备：
细菌或培养细胞：先收集细菌或细胞到离心管内，离心后弃上清；按照每500万细菌或细胞加入1mL试剂一，超声波破碎细菌或细胞（功率20％，超声3s，间隔10s，重复30次）；8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
组织：称取约0.1g组织，加入1mL试剂一进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min，取上清，置冰上待测。
2、血清（浆）样品：直接检测。
二、测定步骤
1、可见分光光度计或酶标仪预热30min以上，调节波长至660nm，蒸馏水调零。
2、酶促反应（在EP管中加入下列试剂）
对照管 | 测定管 | |
试剂一（μL） | 130 | 90 |
试剂二（μL） | 80 | 80 |
试剂三（μL） | 40 | 40 |
试剂四（μL） | 40 | |
样品（μL） | 200 | |
混匀，37℃（哺乳动物）或25℃（其他物种）准确水浴10min | ||
试剂五（μL） | 50 | 50 |
样品（μL） | 200 | |
混匀，4000g，常温离心10min，取上清液 | ||
3 定磷
空白管 | 标准管 | 对照管 | 测定管 | |
0.5μmol/ml标准磷应用液（μL） | 100 | |||
上清液（μL） | 100 | 100 | ||
蒸馏水（μL） | 100 | |||
定磷试剂（μL） | 1000 | 1000 | 1000 | 1000 |
混匀，40℃水浴10min，在660nm处，记录各管吸光值。 | ||||
三、计算
1、血清（浆）Na+K+-ATPase活力的计算：
定义：规定每小时每毫升血清（浆）中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力（U/mL）= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷V样÷T
=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）
2、组织、细菌或细胞中Na+K+- ATPase活力的计算：
（1）按蛋白浓度计算：
定义：规定每小时每毫克组织蛋白中Na+K+- ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/mg prot)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷（Cpr×V样）÷T =7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷Cpr
（2）按样本鲜重计算：
定义：规定每小时每克组织中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/g鲜重)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷(V样÷V样总×W)÷T=7.5×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）÷W
（3）按细菌或细胞密度计算：
定义：规定每小时每1万个细菌或细胞中Na+K+-ATP酶分解ATP产生1μmol无机磷的量为一个酶活力单位。
Na+K+-ATP 酶活力(U/104)= C标准管×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）×V总÷(V样÷V样总×500)÷T=0.015×（A测定管-A对照管）÷（A标准管-A空白管）
C标准管：标准管浓度，0.5μmol/mL；V总：酶促反应总体积，0.5mL；V样：加入样本体积，0.2mL ；V样总：加入试剂一体积，1mL；T：反应时间，1/6小时；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g；500：细菌或细胞总数，500万。
注意事项：
1、由于每一个样都必须做对照，本试剂盒50管保证测24份Na+K+-ATP酶。
2、此法具有微量、灵敏、快速的特点。所以对测定所用试管要求严格无磷。
3、空白管和标准管各只要做一管。
