western blot 之蛋白含量测定

测定方法如下：

一、制作标准曲线

1、从-20℃ 取出 1 mg/ml BSA，室温融化后，备用。

2、取 18 个 1.5 ml 离心管，3 个一组，分别标记为 0 μg，2.5 μg，5.0 μg ，10.0 μg ，20.0 μg ，40.0 μg。

3、按下表在各管中加入各种试剂。

4、混匀后，室温放置 2 min。在生物分光光度计上比色分析。

二、 检测样品蛋白含量

1、取足量的 1.5 ml 离心管，每管加入 4℃ 储存的考马斯亮蓝溶液 1 ml。室温放置 30 min 后即可用于测蛋白。

2、取一管考马斯亮蓝加 0.15mol/L NaCl 溶液 100 μl，混匀放置 2 分钟可做为空白样品，将空白倒入比色杯中在做好标准曲线的程序下按 blank 测空白样品。

3、弃空白样品，用无水乙醇清洗比色杯 2 次（每次 0.5 ml），再用无菌水洗一次。

4、取一管考马斯亮蓝加 95 μl 0.15mol/L NaCl NaCl 溶液和 5μ 待测蛋白样品，混匀后静置 2 min，倒入扣干的比色杯中按 sample 键测样品。

注意：每测一个样品都要将比色杯用无水乙醇洗 2 次，无菌水洗一次。可同时混合好多个样品再一起测，这样对测定大量的蛋白样品可节省很多时间。测得的结果是 5 μl 样品含的蛋白量。