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| 瑞士Cytosurge公司单细胞提取—FluidFM OMNIUM，是将原子力系统、微流控系统、细胞培养系统为体的单细胞操作系统。主要功能包括单细胞注射、单细胞提取、单细胞分离、单细胞粘附力的测定、生物3D打印等。 FluidFM OMNIUM打开了传统单细胞实验手段无法触及域的大门。突破了单细胞研究、药物开发、细胞系开发中的障碍，让细胞膜不再成为阻碍单细胞研究的壁垒。 单细胞提取FluidFM OMNIUM浓缩了FluidFM技术的全部精华，尤其是在自动化程度和操作速度上的提高。它不仅保留了产品在生物学上的能力，更能够将这些功能进行组合来创造更加高效、便捷全新的试验方法。 |
应用域：
FluidFM OMNIUM方便了单细胞水平的研究，尤其适合应用于医疗、单细胞生物学、单细胞质谱、单细胞基因编辑、药物研发等域。
基本参数：
- 单细胞水平的显微注射、提取、分离以及细胞粘附力测定，全过程通过软件设置自动化完成；
- 全自动进行细胞核、细胞质定位注射；
- 软件自动更换探针更换，无需手动加载；
- 样品台移动精度：XY轴不大于1 nm；Z轴不大于0.2nm；
- 探针力学控制：提供探针当前压力值并绘制曲线；
- 配置高灵敏度液体微流控系统，流体压力控制精度：±0.5 mbar；
设备点：
进 | 体 无需购买 额外设备 | 简易 轻点鼠标 | 可控 所有变量均可 通过软件操纵 |
| 单细胞注射 无损注入的将不同类型的物质准确注入到细胞质或者细胞核。 每小时可注射>100个细胞。 |
| 单细胞提取 提取后细胞仍可存活。 |
| 细胞分离 无论悬浮或者贴壁细胞均可分离或者分选。整个过程对细胞无损伤。 |
| 点打印 纳米精度的高密度点打印能够快速建立使用诸如蛋白、DNA等物质 构成生物感应列阵。 |
| 纳米光刻技术 打印纳米精度的各种生物分子所构成的复杂图案。 |
单细胞注射——快速、准确、低损伤
| 更的CRISPR-Cas转染方式： 能够进行高速、高效地将CRISPR-Cas复合物注入细胞，帮助您克服对于传统方式难转染的细胞基因编辑问题。 |
| 提高质粒的转染效率： 相比于传统的转染方式，FluidFM更加温和、快速，对细胞的损伤更小。 |
| 贴壁细胞均可注射： 对于注射细胞的种类，本产品并没有太多的限制，即使像心肌细胞这样的注射难度很高的细胞也能够胜任。 |
| 准确注入体积计算： 通过比对注入荧光分子物质的荧光强度准确计算注入荧光分子的体积。 |
单细胞提取——微量、低创、准确
| 活细胞提取 从活细胞中直接提取内容物，并且提取后细胞仍可存活。 |
| 电镜成像 相比于传统的裂解方式，FluidFM OMNIUM提取的样本更为干净，可以得到很好地电镜图像。 |
| mRNA、酶活力的检测 FluidFM OMNIUM提取的样本也可以直接用于酶活力的测定或mRNA的检测。 |
| 单细胞质谱分析 FluidFM OMNIUM提取样本也可应用于单细胞代谢组学样本的质谱分析。 |
单细胞分离——直观、简单、低损
FluidFM® 气呵成的细胞分离过程 使用FluidFM OMNIUM分离CHO细胞，仅仅点击几次鼠标，单个细胞便准确的完成了转移。
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小样本细胞群分离十分友好 对于细胞数不足以使用流式细胞仪分选时，FluidFM OMNIUM很好的*。
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测试数据
肝细胞的微量注射
HeLa细胞的微量提取
CHO细胞的单细胞分离
纳米光刻DAPI染料
发表文章
单细胞注射：
1. O.Guillaume-Gentil, E.Potthoff, D.Ossola, et al. Force-controlled fluidic injection into single cell nuclei.(2013)Small,9(11),1904−1907. doi:10.1002/ smll.201202276A.
2. Meister, M. Gabi, P.Behr, et al. FluidFM: Combining atomic force microscopy and nanofluidics in a universal liquid delivery system for single cell applications and beyond.(2009) Nano Letters, 9(6), 2501−2507. doi:10.1021/nl901384x
单细胞提取：
1. O. Guillaume-Gentil, T. Rey, P. Kiefer, A.J. Ibáñez, R. Steinhoff, R. Brönnimann, L. Dorwling-Carter, H. Zambelli, R. Zenobi & J.A. Vorholt. Single-Cell Mass Spectrometry of Metabolites Extracted from Live Cells by Fluidic Force Microscopy. (May 2017) Anal Chem., 89(9), 5017-5023. doi:10.1021/acs.analchem.7b00367
2. O. Guillaume-Gentil, R.V. Grindberg, R. Kooger, L. Dorwling-Carter, V. Martinez, D. Ossola, M. Pilhofer, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Tunable Single-Cell Extraction for Molecular Analyses. (Jul 2016) Cell, 166(2), 506-516. doi: 10.1016/j. cell.2016.06.025.
单细胞分离：
1. O. Guillaume-Gentil, T. Zambelli & J.A. Vorholt.Isolation of single mammalian cells from adherent cultures by fluidic force microscopy. (2014) Lab on a chip, 14(2), 402-414. doi:10.1039/c3lc51174j
2. P. Stiefel, T. Zambelli & J.A. Vorholt. Isolation of optically targeted single bacteria by application of fluidic force microscopy to aerobic anoxygenic phototrophs from the phyllosphere. (2013) Applied and Environmental Microbiology, 79(16), 4895-4905. doi:10.1128/AEM.01087-13P.
3. Dörig, P. Stiefel, P. Behr, et al. Force-controlled spatial manipulation of viable mammalian cells and micro-organisms by means of FluidFM technology.(2010) Applied Physics Letters, 97(2), 023701 1-3. doi:10.1063/1.3462979
新发表：
2021
1. M. Mathelié-Guinlet, F. Viela, J. Dehullu, S. Filimova, J.M. Rauceo, P.N. Lipke & Y.F. Dufrêne. Single-cell fluidic force microscopy reveals stress-dependent molecular interactions in yeast mating. (2021) Commun Biol. doi: 10.1038/s42003-020-01498-9
AFM Series: Adhesion of single cells
2020
1. A.G. Nagy, A. Bonyár, I. Székács & R. Horvath. Analysis of single-cell force-spectroscopy data of Vero cells recorded by FluidFM BOT. (2020) IEEE 26th International Symposium for Design and Technology in Electronic Packaging (SIITME). doi: 10.1109/SIITME50350.2020.9292265, BIO Series: Adhesion of single cells
2. I. Demir, J. Blockx, E. Dague, P. Guiraud, W. Thielmans, K. Muylaert & C. Formosa-Dague. Nanoscale Evidence Unravels Microalgae Flocculation Mechanism Induced by Chitosan. (2020) ACS Applied Biomaterials. doi: 10.1021/acsabm.0c007722. AFM Series: Adhesion of single cells
3. P. Saha, T. Duanis-Assaf & M. Reches. Fundamentals and Applications of FluidFM Technology in Single-Cell Studies. (2020) Advanced Materials Interfaces. doi: 10.1002/admi.20001115. AFM Series: REVIEW
4. T. Schlotter, S. Weaver, C. Forró, D. Momotenko, J. Voros, T. Zambelli & M. Aramesh. Force-Controlled formation of dynamic nanopores for single-biomolecule sensing and single-cell secretomics. (2020) ACS Nano. doi: 10.1021/acs.nano.0c04281. AFM Series: SICM, other
5. L. Hofherr, C. Müller-Renno, C. Ziegler. FluidFM as a tool to study adhesion forces of bacteria - Optimization of parameters and comparison to conventional bacterial probe Scanning Force Spectroscopy. (2020). PLOS ONE. doi: 10.1371/journal.pone.0227395. AFM Series: Adhesion of single bacteria
6. T. Schlotter, S. Weaver, T. Zambelli, J. Voros & M. Aramesh. Force-controlled nanopores for single cell measurements using micro-channelled AFM Cantilevers. (2020). Biophysical Journal. doi: 10.1016/j.bpj.2019.11.1066. AFM Series: Other
7. J. Zhang, H. Yu, B. Harris, Y. Zheng, U. Celik, L. Na, R. Faller, X. Chen, D. R. Haudenschild, G. Liu. New Means to Control Molecular Assembly (2020) ACS Publications. doi.org/10.1021/acs.jpcc.9b11377. BIO Series: Nanolithography
8. P. Wysotzki, A. Sancho, J. Gimsa, J. Groll. A comparative analysis of detachment forces and energies in initial and mature cell-material interaction (2020) Science Direct. doi.org/10.1016/j.colsurfb.2020.110894. AFM Series: Single Force Spectroscopy
9. M. Sztilkovics, T. Gerecsei, B. Peter, A. Saftics, S. Kurunczi, I. Szekacs, B. Szabo & R. Horvath. Single-cell adhesion force kinetics of cell populations from combined label-free optical biosensor and robotic fluidic force microscopy. (2020) Scientific Reports. doi: 10.1038/s41598-019-56898-7. BIO Series: Adhesion of single cells
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