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本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和*的缓冲液系统，提取组织和细胞的基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司*新型材料，能够高效、专一吸附DNA，可大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA段大，纯度高，质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作，包括酶切、 PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
操作步骤：
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入休积请参照瓶体上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
1、样品的处理：
a、细胞：取1×106-1×107个悬浮培养细胞，12000rpm离心1min收集细胞，贴壁细胞先用胰蛋白酶消化处理，再用预冷的PBS吹打成细胞悬液，然后12000rpm离心1min收集细胞，尽量除去上清，加200ul溶液A，振荡*混匀。
b、组织：组织量不宜过大，一般不要超过25mg，可以使用匀浆器匀浆，好用液氮研磨成粉末状，再用预冷的PBS或无菌水充分悬浮，然后12000rpm离心1min收集细胞，尽量除去上清，加200ul溶液A，振荡*混匀。
2、向悬浮液中加入20ul (10mg/ml) 的RNase A，55℃放置15min。
3、加入20ul ( 10mg /ml ) 的蛋白酶K，充分颠倒混匀，55℃水浴消化，细胞消化时间较短，组织消化时间较长，一般需要1-3个小时才能完成（鼠尾需要消化）。消化期间可颠倒离心管混匀数次，直样品消化*为止。消化*的指标是：液体清亮及粘稠。
4、加入200ul体积溶液B，充分颠倒混匀，如出现白色沉淀，可放置于75℃ 15-30min，沉淀即会消失，不影
响后续实验。如溶液未变清亮，说明样品消化不*，可能导致提取的DNA量少及不纯，还有可能导致堵塞吸附柱。
5、加入200ul无水乙醇，充分混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中。
6、12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
7、向吸附柱中加入700ul漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)， 12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
8、向吸附柱中加入500ul漂洗液，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
9、12000rpm离心2min，将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。
10、将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50-200ul经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min，12000rpm离心2min。
11、可将离心所得洗脱液再加入吸附柱中，12000rpm离心2min，即可得到高质量的基因组DNA。

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注意事项:
1、试剂盒拆封后，RNase A和蛋白酶K需放置-20℃保存。
2、样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA段较小且提取量也下降。
3、如果试剂盒中的溶液出现沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响效果。
4、洗脱缓冲液的体积好不少于50ul，体积过小会影响回收效率:洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调此范围)，pH 值低于7.0会降低洗脱效率。

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