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1、RNA纯化系列产品
2、DNA纯化系列产品
3、电泳及回收系列产品
4、探针标记及检测系列产品
5、核酸扩增系列产品
6、克隆表达系列产品
7、基因组研究系列产品
8、蛋白质研究系列产品
9、细胞生物学研究系列产品
10、即用型溶液、质粒库、菌种库等等
图片的详细介绍：

非冻型尿液 DNA 保存液100mL图片DNA提取流程图：

问：常用的DNA 浓度及纯度检测方法有哪些？
称答：非冻型尿液 DNA 保存液100mL图片回收得到的DNA 可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。琼脂糖凝胶电泳通过对比定量的Marker 来定量浓度；紫外分光检测OD260/280 比值，OD260/280 比值在1.7-1.9 之间说明所得  DNA  纯度较好，如果洗脱时不使用溶液Eluent而使用去离子水，比值会偏低，因为pH 值和离子存在会影响光吸收值，但不表示纯度低。
问：长段回收时应注意哪些问题？
答：当DNA段长度较长（5   kb 以上）时，回收效率会有所下降，这是DNA 切胶回收时的常见现象。此时建议按以下方法解决问题：
    1 适当增加待回收DNA 样品的点样量；
    2 由于长段DNA 不易从树脂上洗脱下来，建议洗脱两次，可以提高洗脱效率；
    3 减少操作过程中对长段DNA 的物理损伤，如混合振荡操作不要过于剧烈，切胶时不要将DNA 长时间暴露在紫外等下。

非冻型尿液 DNA 保存液100mL图片注意事项：

● 电泳时请使用新鲜配制的TAE 电泳缓冲液，以免影响电泳及回收效果。
● 请适当延长电泳时间，在条带分离清晰后进行切胶回收，以免回收到多余杂带。
● 为提高DNA 回收收率，切胶时应尽量除去多余的胶块。
● 本试剂盒纯化柱的DNA 吸附能力强。但如果DNA 浓度小，或DNA 初始量少，回收率将会偏低。
● 溶液Eluent（10 mM Tris-HCl, pH 8.5）中不含EDTA，其收集的DNA 段可直接用于各种酶促反应等，不会影响后续试验。
● 为了保证回收效率，请不要使用未调整pH 值的超纯水洗脱目的段。
● 请严格按照操作步骤操作。邻溴三氟甲氧基苯    64115-88-4    
4--3-[[4-(3-吡啶基)-2-嘧啶基]氨基]苯甲酸    641569-94-0    
3-(4-1H-咪唑-1-基)-5-(三)苯胺    641571-11-1    
9-蒽甲醛    642-31-9    
1,2-二氟-4-碘代苯    64248-58-4    
3,4-二氟苯腈    64248-62-0    
3,5-二氟苯甲腈    64248-63-1    
2,5-二氟苯腈    64248-64-2    
活性炭    64365-11-3    
4-氟-3-甲    64465-53-8    
苯基二氯化磷    644-97-3    
1-碘-3-硝基苯    645-00-1    
基甲酰氯    6452-47-7    
6-氯喹啉-8-羧酸    6456-78-6    
4-羟    6457-49-4    
1,3-二氧戊环    646-06-0    
4-酸    646-07-1    
碘乙酸    64-69-7    体
C1orf177    1号染色体开放阅读框177抗体
C1orf183    1号染色体开放阅读框183抗体
Clenbuterol    克仑特罗/瘦肉精抗体
C6orf151    6号染色体开放阅读框151抗体
C15orf52    15号染色体开放阅读框52抗体
C2orf89    2号染色体开放阅读框89抗体
CARD10    BCL10结合蛋白和激活核转录因子抗体
CARD15    凋亡加强结构域蛋白15抗体
CLLD6    慢性淋巴细胞白血病缺失基因6蛋白抗体
C13orf38    13号染色体开放阅读框38抗体
C14ORF140    14号染色体开放阅读框140抗体
CHAC2    阳离子转运调节样蛋白2抗体
非冻型尿液 DNA 保存液100mL图片C15orf62    15号染色体开放阅读框62抗体
C15orf41    15号染色体开放阅读框41抗体
CNGA2    环核苷酸阳离子通道蛋白α2抗体
硝酸铵    6484-52-2

操作步骤：
1  非冻型尿液 DNA 保存液100mL图片切取含有目的DNA段的琼脂糖凝胶条带。
   ● 尽量切除不含有目的DNA 部分的凝胶，减少凝胶体积，提高DNA 回收率。
   ● 切胶时，请使用长波长UV  （360 nm ）光盒。且不要将DNA 长时间暴露在紫外灯下，以防DNA 损伤。
2  称取凝胶的重量近似地确定其体积。
   ● 凝胶重量的称量方法：取1.5 ml 离心管电子天平称初质量，切胶装在离心管后称终质量，两者差即为胶的质量。不同离心管的重量可能有差异，因此，每个离心管的重量需单独称量。
3  按照每100 mg 琼脂糖凝胶对应100 µl 溶液BD 的比例，向离心管中加入溶液BD。
4  50 ℃水浴7-10min，直至凝胶*溶化。期间需要振荡混合3 次。
   ● 琼脂糖必须*融化，以免堵塞柱子，严重影响DN段的回收效率。
   ● 如果总体积大于500 µl，可适当增加溶胶时间。
   ● 若此时溶液变红，可加10 µl 3M NaAC  （pH 5.2）。
5  将步骤4 所获溶液置于DNA 纯化柱中，静置2min 。
   ● 胶块*溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为纯化柱在较高温度时结合DNA  的能力较弱。
6  12,000 rpm 离心1min。若溶液量大于DNA 纯化柱的容积，可分两次离心，弃滤液。
   ● 此时DNA 片段被吸附于DNA 纯化柱中的硅胶膜上。
7  加入500 µl 溶液BD。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液
8  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液。
   ● 溶液PE 初次使用前用无水乙醇按1: 4 稀释，即含80% 乙醇。
   ● 此步骤的作用是将硅胶膜上吸附的蛋白、盐等杂质洗脱，以获得高质量DNA 片段。
9  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液。
10 12,000 rpm 离心  3min ，以*去除纯化柱中的液体。
   ● 此步骤的作用是去除残留乙醇，避免残留乙醇影响后续酶促反应。同时也利于DNA 片段的充分溶解。