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公司非鼻腔采样拭子 50 支图片的RNA/DNA提取目录有下面10个系列，5000余种产品：点击了解更RNA纯化。
1、RNA纯化系列产品
2、DNA纯化系列产品
3、电泳及回收系列产品
4、探针标记及检测系列产品
5、核酸扩增系列产品
6、克隆表达系列产品
7、基因组研究系列产品
8、蛋白质研究系列产品
9、细胞生物学研究系列产品
10、即用型溶液、质粒库、菌种库等等
图片的详细介绍：

非鼻腔采样拭子 50 支图片DNA提取流程图：

问：常用的DNA 浓度及纯度检测方法有哪些？
称答：非鼻腔采样拭子 50 支图片回收得到的DNA 可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。琼脂糖凝胶电泳通过对比定量的Marker 来定量浓度；紫外分光检测OD260/280 比值，OD260/280 比值在1.7-1.9 之间说明所得  DNA  纯度较好，如果洗脱时不使用溶液Eluent而使用去离子水，比值会偏低，因为pH 值和离子存在会影响光吸收值，但不表示纯度低。
问：长段回收时应注意哪些问题？
答：当DNA段长度较长（5   kb 以上）时，回收效率会有所下降，这是DNA 切胶回收时的常见现象。此时建议按以下方法解决问题：
    1 适当增加待回收DNA 样品的点样量；
    2 由于长段DNA 不易从树脂上洗脱下来，建议洗脱两次，可以提高洗脱效率；
    3 减少操作过程中对长段DNA 的物理损伤，如混合振荡操作不要过于剧烈，切胶时不要将DNA 长时间暴露在紫外等下。

非鼻腔采样拭子 50 支图片注意事项：
●溶液PE *次使用前请按瓶上标签加入4 倍体积的无水乙醇，即15 ml 溶液PE 中加入60 ml 无水乙醇，20 ml 溶液PE 中加入80 ml 无水乙醇，使用后立即盖紧盖子。
● 本产品对电泳使用的Agarose 种类没有严格限制，可以使用普通Agarose 。为了保证回收DNA 的质量和DNA 回收效率，希望使用高纯度的Agarose ，但没有必要一定要使用低熔点的Agarose 等。
● 电泳时请使用新鲜配制的TAE 电泳缓冲液，以免影响电泳及回收效果。
● 请适当延长电泳时间，在条带分离清晰后进行切胶回收，以免回收到多余杂带。
● 为提高DNA 回收收率，切胶时应尽量除去多余的胶块。
● 本试剂盒纯化柱的DNA 吸附能力强。但如果DNA 浓度小，或DNA 初始量少，回收率将会偏低。
● 溶液Eluent（10 mM Tris-HCl, pH 8.5）中不含EDTA，其收集的DNA 段可直接用于各种酶促反应等，不会影响后续试验。
● 为了保证回收效率，请不要使用未调整pH 值的超纯水洗脱目的段。
● 请严格按照操作步骤操作。3,5-二氯苯硼酸    67492-50-6    
4-氟-3-三氟甲基    67515-60-0    
4-溴-2,6-二氟苯胺    67567-26-4    
反-(1R,2R)-N,N'-二甲基1,2-环己烷二胺    67579-81-1    
五碳醛糖    6763-34-4    
4-乙基-4,10-二羟基-1H-吡喃[3',4':6,7]吲哚[1,2-B]喹啉-3,14(4H,12H)-二酮    67656-30-8    
二甲基砜    67-71-0    
叔丁基氯化镁    677-22-5    
4-苄氧基溴苯    6793-92-6    
1-(4-溴苯基)盐酸盐    68104-62-1    
(S)-(-)-4-羟基-2-吡咯烷酮    68108-18-9    
4-(溴甲基)苯硼酸    68162-47-0    
5-甲基咪唑-4-甲醛    68282-53-1    
R-1-BOC-2-氨甲基哌啶    683233-14-9CNR1    钙粘蛋白相关的神经受体1抗体
CDX2+3    尾侧型同源转录因子2/3抗体
Cyclin H    周期素H抗体
C6orf15    6号染色体开放阅读框15抗体
CD95    载脂蛋白A1抗体
CDKN2A/p14ARF    抑癌基因p14抗体
CDKN2A/p16-INK4a    抑癌基因p16抗体
CDKN1B    P27抗体/周期素依赖激酶抑制剂
非鼻腔采样拭子 50 支图片C9orf171     9号染色体开放阅读框171抗体
C20orf177    20号染色体开放阅读框177抗体
CD244    CD244抗体
CCL3    巨噬细胞炎性蛋白1α抗体

操作步骤：
1  非鼻腔采样拭子 50 支图片切取含有目的DNA段的琼脂糖凝胶条带。
   ● 尽量切除不含有目的DNA 部分的凝胶，减少凝胶体积，提高DNA 回收率。
   ● 切胶时，请使用长波长UV  （360 nm ）光盒。且不要将DNA 长时间暴露在紫外灯下，以防DNA 损伤。
2  称取凝胶的重量近似地确定其体积。
   ● 凝胶重量的称量方法：取1.5 ml 离心管电子天平称初质量，切胶装在离心管后称终质量，两者差即为胶的质量。不同离心管的重量可能有差异，因此，每个离心管的重量需单独称量。
3  按照每100 mg 琼脂糖凝胶对应100 µl 溶液BD 的比例，向离心管中加入溶液BD。
4  50 ℃水浴7-10min，直至凝胶*溶化。期间需要振荡混合3 次。
   ● 琼脂糖必须*融化，以免堵塞柱子，严重影响DN段的回收效率。
   ● 如果总体积大于500 µl，可适当增加溶胶时间。
   ● 若此时溶液变红，可加10 µl 3M NaAC  （pH 5.2）。
5  将步骤4 所获溶液置于DNA 纯化柱中，静置2min 。
   ● 胶块*溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为纯化柱在较高温度时结合DNA  的能力较弱。
6  12,000 rpm 离心1min。若溶液量大于DNA 纯化柱的容积，可分两次离心，弃滤液。
   ● 此时DNA 片段被吸附于DNA 纯化柱中的硅胶膜上。
7  加入500 µl 溶液BD。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液
8  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液。
   ● 溶液PE 初次使用前用无水乙醇按1: 4 稀释，即含80% 乙醇。
   ● 此步骤的作用是将硅胶膜上吸附的蛋白、盐等杂质洗脱，以获得高质量DNA 片段。
9  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min，弃滤液。
10 12,000 rpm 离心  3min ，以*去除纯化柱中的液体。
   ● 此步骤的作用是去除残留乙醇，避免残留乙醇影响后续酶促反应。同时也利于DNA 片段的充分溶解。
11  将离心柱置于新的1.5 ml 离心管中。向纯化柱的中央处，悬空滴加30-100 µl 溶液Eluent  （60℃预热），静置2min 。12,000 rpm  离心1min，管底即为目的DNA 片段。贮存于-20℃。
   ● 溶液Eluent 可用无菌双蒸水代替，但其pH 需为8.0-8.5，加入体积视DNA 目的片段的多少、用户对目的片段浓度要求而定。
   ● 对溶液Eluent 60℃预热，会提高提取DNA 目的片段的产量。