商品属性：

本试剂盒采用裂解液，可快速可靠的从病毒液样本中纯化出高纯度的总 RNA。该试剂盒是目前国际上操作步骤最少、用时最短的病毒 RNA 提取试剂盒（仅需要 5 分钟）。应用本试剂盒提取的 RNA 可直接用于反转录、基因克隆、定量 PCR 检测等多种分子生物学实验。
注意事项：
(1) 本试剂盒中的 Washing Buffer 中已经加乙醇，无需单独添加。
(2) RNA LB1 和 RNA BB2 均具有腐蚀性，注意防护。
操作方法
（1）裂解/上柱（1.5ml EP 管中处理）
液体样本：血清、血浆、唾液、痰液、尿液、细胞培养病毒上清液等液体样本直接吸取 150 μl 到 1.5ml EP 管中，并加入 120 μl RNALB1，漩涡混合均匀 10 秒。打开 1.5ml EP 管盖，并加入 500 μl RNABB2 中，漩涡混合均匀 10 秒。倒入吸附柱中，13000 rpm 离心 30秒，倒掉过柱后的废液，进行后续洗涤/洗脱步骤。
抗凝全血：直接吸取 150 μl 到 1.5 ml EP 管中，并加入 120 μl RNA
LB1，漩涡混合均匀 10 秒。打开 1.5 ml EP 管盖，并加入 500 μl RNA
BB2 中，漩涡混合均匀 10 秒。13000 rpm 离心 30 秒后，将上清液倒入吸附柱中，13000 rpm 离心 30 秒，倒掉过柱后的废液，进行后续洗涤/洗脱步骤。
固体样本：组织、粪便等样本。取 10~100 mg 固体材料样本，加入到 300 μl RNA LB1 中（1.5ml EP 管），并加入几粒钢珠（一般3~4 粒），置于组织研磨仪中，研磨 1 分钟。研磨完毕后，打开管
盖，向匀浆液中加入 750 μl RNA BB2，并 13000 rpm 离心 1 分钟。
打开管盖，用 1 ml 吸头吸取 750 μl 上清液到吸附柱中。13000 rpm离心 30 秒，倒掉过柱废液，进行后续洗涤/洗脱步骤。
（2） 洗涤和洗脱
上述裂解/上柱操作完毕后，向吸附柱中加入 500 μl WashingBuffer，13000 rpm 离心 15 秒，并倒掉过柱废液。重复此洗涤步骤一次。 将吸附柱重新放回离心机，13000 rpm 空离心 1min，将残留的乙醇甩干。 将吸附柱芯放入到 1.5 mL Nuclease Free收集管中，向吸附柱芯中加入 20~50 μl Nuclease Free H2O，室温放置1 min，13,000rpm离心 1min，洗脱液即为提取的病毒RNA，冷冻保存。
特别说明：
（1）RNA LB1 和 RNA BB2 含有高盐，在样本加入到此溶液后，病毒会迅速灭活。同时此溶液对皮肤有腐蚀性，务必做好防护，如接触到皮肤，用大量清水冲洗。
（2）样本处理过程中的吸头等材料可能含病毒分子，实验完毕后务必妥善处理，不能随意丢弃。

PCR基本步骤及注意事项？

一、实验原理

PCR是体外人工选择性扩增DNA的一种方法，它类似于生物体内DNA的复制。在生物体内DNA复制需要模板、引物、DNA聚合酶、DNA解旋酶、 dNTPs；而体外PCR反应同样需要类似的成分，有模板、引物、PCR Buffer、Taq酶、dNTPs。其中引物是人工设计的特定序列，实现对特定位置的扩增；PCR Buffer提供一个反应的缓冲环境；反应过程同生物体内一样，DNA双链打开，引物结合模板，延伸形成新链。而这些过程在生物体内靠DNA解旋酶解链，而在体外在通过控制反应温度实现的。如常用94℃变性模板DNA打开双链，在退火温度处引物结合到模板上，最后在72℃完成延伸，并反复重复此过程即可实现对特定片段DNA的大量扩增。到第三循环开始才产生出和靶DNA区段相同的DNA分子，进一步循环地产生出靶DNA区段的指数加倍。

在扩增后期,由于产物积累,使原来呈指数扩增的反应变成平坦的曲线,产物不再随循环数而明显上升,这称为平台效应。平台期(Plateau)会使原先由于错配而产生的低浓度非特异性产物继续大量扩增，达到较高水平。因此，应适当调节循环次数，在平台期前结束反应， 减少非特异性产物。到达平台期(Plateau)所需循环次数取决于样品中模板的拷贝。

二、主要的成分

1.模板可以是多种形式，主要包括基因组DNA、质粒DNA、携带病毒的基因组DNA、PCR产物，cDNA等，但不能为RNA。对于不同类型的模板，其主要不同在于预变性的时间以及模板的量。一般对于大的基因组DNA预变性时间10min足够，质粒DNA2min、携带病毒的基因组DNA预变性2min、PCR产物预变性2min即可。

注意cDNA为单链DNA，但仍可做PCR的模板，只不过在第一轮循环时只有一个引物结合，合成另一条链。从第二轮开始，两个引物均与特异位点结合，从而实现了与常规PCR的接轨。而同作为单链的RNA却不能进行PCR扩增，原因就在于实现PCR反应的是DNA聚合酶，只能特意识别DNA链。

2.对于模版的量来说，一般25ul体系DNA的质量为50—100ng。对于基因组DNA由于其结构比较复杂，提取的浓度也往往比较大，为防止浓度过大对PCR造成影响，故需对提取的DNA进行梯度稀释。否则浓度过高则可能会引起非特异性扩增。对于质粒及PCR产物由于其结构简单，且提取浓度一般较低，则无需稀释。

PCR实验中应该注意的问题有哪些?

没有ct值

检测结果遇到没有Ct值情况,排查是否有以下问题:

1、循环数不够(一般不超过45循环,不仅背景值提高,定量也不准);

2、PCR程序设置错误,检测荧光信号的步骤有误。一般SG法采用72℃延伸时采集,TaqMan法则一般在退火结束时或延伸时采集信号,另外荧光采集是否选中;

3、引物或探针降解。可通过PAGE电泳检测引物和探针是否降解;

4、模板量可能降解或上样量不足(不超过500ng,根据试剂盒说明书即可), 对未知浓度的样本应从系列稀释样本的最高浓度做起;如果发生模板降解,应考虑样本准备中杂质的引入及反复冻融的情况,建议将模板样本小量分装储备,避免反复冻融;

5、引物探针是否合适(尤其是引物跨越内含子,以确保扩增基因组DNA;上下游引物Tm值超过4℃以上也会影响扩增)。

ct值过晚

在相对定量中, Ct值一般控制在15—25之间比较好,如果在绝对定量中, 对低拷贝数的样品,Ct值会增大, 但是一般不宜超过40循环, 否则定量不准确。

因此,判断Ct值出现过晚是否属于非正常情况, 需要根据具体实验设计和目的进行。

1、扩增效率低。引物之间或者引物和探针的比例不合适, 需要进行优化;引物或探针设计不合理, 需要重新设计;

2、PCR程序不合适, 改用三步法进行反应, 或者优化退火/延伸温度, 可以适当降低退火温度; 退火/延伸时间短(可以在推荐的时间条件下延长10s);

3、MgCl2浓度不合适,增加镁离子浓度等。PCR各种反应成分的降解或加样量的不足;

4、PCR产物太长。PCR产物设计超过500bp;

5、模板中存在抑制物。用高纯度模板进行PCR检测或将模板进行稀释。

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